Toto je článok o glukoneogenéze. O glykogenolýze pozriglykogenolýza.
Zjednodušená glukoneogenéza (tak, ako prebieha v ľuďoch). Acetyl-koenzým A získaný z mastných kyselín (bodkovaná šípka) môže byť v menšej miere konvertovaný na pyruvát počas hladovania.
Glukoneogenéza (GNG) je metabolická dráha, ktorá vedie k vytvoreniuglukózy z niektorýchnesacharidových uhlíkových substrátov. Tento proces prebieha vo všetkých živých organizmoch - v rastlinách, živočíchoch, hubách, baktériach i iných mikroorganizmoch.[1] U stavovcov prebieha glukoneogenéza hlavne vpečeni a v menšej miere vkôreobličiek. Je to jeden z dvoch hlavných procesov - druhým je rozkladglykogénu (glykogenolýza) - ktorými ľudia a mnohé zvieratá udržiavajú stabilnú hladinuglukózy v krvi, aby predišli jej zníženiu (hypoglykémii).[2] Uprežúvavcov, u ktorých sú sacharidy z potravy zvyčajne metabolizované mikroorganizmami v bachore, prebieha glukoneogenéza stále bez ohľadu na postenie, nízky príjem sacharidov, pohyb a podobne.[3] U mnohých iných zvierat prebiaha často práve počas pôstu, hladovania, nízkeho príjmu sacharidov alebo intenzívneho pohybu čicvičenia.
U ľudí môže substrát pre glukoneogenézu pochádzať z akýchkoľvek nesacharidových zdrojov, ktoré je možné premeniť napyruvát alebo na niektorý z medziproduktov glykolýzy (pozri nižšie). Pri rozkladeproteínov je možné využiťglukogénne aminokyseliny (ale nieketogénne aminokyseliny). Pri rozkladelipidov (napríkladtriacylglycerolov) je možné využiťglycerol a mastné kyseliny s nepárnym počtom uhlíkov (ale nie mastné kyseliny s párnym počtom uhlíkov, pozri nižšie). Pri iných metabolizmoch je možné využiť napríkladlaktát zCoriho cyklu. Pri dlhšom postení je možné využiť iacetón vznikajúci zketolátok, čím je možné docieliť premenu látok z mastných kyselín na glukózu.[4] Aj keď glukoneogenéza zvyčajne prebieha v pečeni, relatívny príspevok obličiek ku glukoneogenéze sa zvyšuje pri diabete alebo dlhšom hladovaní.[5]
Glukoneogenéza je silne endergonická, ale spojením s hydrolýzouATP aleboGTP sa z nej prakticky stane exergonický proces. Napríklad dráha vedúca odpyruvátu kuglukóza-6-fosfátu vyžaduje 4 molekuly ATP a 2 molekuly GTP, aby prebehla spontánne. Tieto ATP sú získavané zmetabolizmu mastných kyselín pomocoubeta oxidácie.[6]
U ľudí sú hlavnými prekurzormi glukoneogenézylaktát,glycerol (ktorý je súčasťoutriacylglycerolov),alanín aglutamín. Celkovo zahŕňajú až 90% zdrojov glukoneogenézy.[7] Ostatnéglukogénne aminokyseliny a všetky intermediátycitrátového cyklu (pomocou premeny naoxalacetát) je možné takisto využiť ako substráty pre glukoneogenézu.[8] Všeobecne však konzumácia glukoneogénnych substrátov v potrave nevedie k zvýšenej glukoneogenéze.[9]
Kaatabolizmus proteinogénnych aminokyselín. Aminokyseliny sú klasifikované podľa ich schopnosti vstúpiť do glukoneogenézy:[10] * Glukogénne aminokyseliny (červené) túto schopnosť majú.* Ketogénne aminokyseliny (zelené) túto možnosť nemajú. Namiesto toho vstupujú doketogenézy alebosyntézy lipidov.* Niektoré aminokyseliny môžu byť metabolizované oboma spôsobmi (fialové).
U prežúvavcov je hlavným substrátom pre glukoneogenézupropionát.[3][11] U ostatných organizmov vzniká propionát v beta oxidácii mastných kyselín s nepárnym počtom uhlíkov a u vetvených aminokyselín a je len subtrátom len v relatívne malom množstve.[12][13]
Laktát je transportovaný naspäť do pečene vCoriho cykle, kde je premenený na pyruvát pomocoulaktátdehydrogenázy. Pyruvát, prvý substrát predurčený na glukoneogenézu, potom môže byť využitý na syntézu glukózy.[8] Transaminácia alebo deaminácia aminokyselín umožňuje vstup ich uhlíkovej kostry do cyklu priamo (ako pyruvát alebo oxalacetát) alebo nepriamo (cez citrátový cyklus). Príspevok laktátu z Coriho cyklu na celkovú produkciu glukózy sa zvyšuje s dĺžkou hladovania.[14] Konkrétne, po 12, 20 a 40 hodinách hladovania u ľudských dobrovoľníkov bol príspevok laktátu z Coriho cyklu ku glukoneogenéze 41%, 71% a 92%.[14]
V biochémii bola dlho nezodpovedná otázka, či môžu byť na glukózy u zvierat konvertované ajmastné kyseliny s párnym počtom uhlíkom.[15] Mastné kyseliny s nepárnym počtom uhlíkov je možno oxidovať naacetylkoenzým A apropionylkoenzým A, pričom propionylkoenzým A potom môže fungovať ako prekurzorsukcinylkoenzýmu A, ktorý sa následne môže premeniť na pyruvát a vstúpiť do glukoneogenézy. Naproti tomu mastné kyseliny s párnym počtom uhlíkov sú oxidované len na acetylkoenzým A. Ten môže vstúpiť do glukoneogenézy len pomocouglyoxylátového cyklu, pri ktorom sa z neho tvoria štvoruhlíkovédikarboxylové kyseliny ako prekurzory.[8] Glyoxylátový cyklus zahŕňa dva enzýmy,malátsyntázu aizocitrátlyázu, ktoré sú prítomné v hubách, rastlinách a baktériách. Napriek niekoľkým správam o detekcii enzýmovej aktivity týchto enzýmov u zvierat boli však gény kódujúce oba tieto enzýmy nájdené len uhlístovcov, u ktorých existujú ako jeden bifunkčný enzým.[16][17] Gény kódujúce len malátsyntázu (ale nie izocitrátlyázu) boli identifikované i u iných živočíchov, napríkladčlánkonožcov,ostnatokožcov a dokonac i u niektorýchstavovcov. Cicavce, u ktorých bola objavená malátsyntáza, zahŕňajúkloakovce (vtákopysk) avačkovce (vačica), ale nie uplacentovcov.[17]
Existencia glyoxylátového cyklu u ľudí nebola potvrdená a je teda všeobecne predpokladné, že u ľudí nemôžu byť mastné kyseliny premenené na glukózu priamo. Bolo ukázané, že uhlík-14 sa objaví v glukóze, ak je dodaný v podobe mastných kyselín,[18] ale toto sa dá predpokladať na základe zabudovávania značených atómov odvodených z acetylkoenzýmu A do intermediátov citrátového cyklu, ktoré sú zameniteľné s tými odvodenými z iných fyziologických zdrojov, ako sú glukogénne aminokyseliny.[15] Bez prítomnosti ostatných glukogénnych zdrojov nemôže dvojuhlíkový acetylkoenzým A odvodený z oxidácie mastných kyselín viesť k celkovému zisku glukózy cez citrátový cyklus, pretože v citrátovom cykle sú dva atómy uhlíku uvoľnené v podobe oxidu uhličitého. Počasketózy sa však acetylkoenzým A z mastných kyselín využíva na tvorbuketolátok, vrátaneacetónu, a až ~60% acetónu môže byť oxidovaných v pečeni na pyruvátové prekurzory acetol (hydroxyacetón) ametylglyoxal.[19][4] Ketolátky vytvorené z mastných kyselín by teda mohli tvoriť až 11% glukoneogenézy počas hladovania. Katabolizmus mastných kyselín produkuje aj energiu v podove ATP, ktorá je nutná pre glukoneogenézu.
U cicavcov sa predpokladalo, že glukoneogenéza prebieha len v pečeni,[20] obličkách,[20] črevách[21] a svaloch,[chýba zdroj] ale nové poznatky poukazujú na to, že glukoneogenéza prebieha i vastrocytoch v mozgu.[22] Tieto orgány využívajú mierne odlišné prekurzory glukoneogenézy. Pečen využíva predovšetkým lakát, glycerol a glukogénne aminokyseliny (hlavne alanín), zatiaľ čo obličky využívajú laktát, glutamín a glycerol.[23][7] Lakát z Coriho cyklu je kvantitatívne najväčším zdrojom substrátu pre glukoneogenézu, a to hlavne v obličkách.[7] Pečeň využíva glykogenolýzu i glukoneogenézu na tvorbu glukózy, zatiaľ čo obličky využívajú len glukoneogenézu.[7] Po jedle sa pečeň sústredí skôr na syntézu glykogénu a u obličiek sa zvýši glukoneogenéza.[9] Črevá využívajú hlavne glutamín a glycerol.[21]
Propionát je hlavným zdrojom glukoneogenézy v pečeni prežúvavcov a ich pečeň môže zároveň využívať glukogénne aminokyseliny (napríklad alanín) vo väčšom množstve, keď sa zvýši dopyt po glukóze.[24] Kapacita buniek pečene využiť laktát na glukoneogenézu sa znižuje počas životného vývoja prežúvavcov u teliat a jahniat.[25] V tkanive ovčích obličiek bol pozorovaný vysoký obrat glukoneogenézy z propionátu.[26]
Vo všetkých druhoch je tvorba oxalacetátu z pyruvátu a intermediátov citrátového cyklu obmedzená len na mitochondrie. a enzýmy konvertujúce fosfoenolpyruvát (PEP) na glukóza-6-fosfát sú prítomné v cytozole.[27] Umiestnenie enzýmu, ktorý spája tieto dve často glukoneogenézy premenou oxalacetátu na PEP -PEP karboxykináza (PEPCK) - sa medzidruhovo mení: enzým sa môže nachádzať výlučne v mitochondiách, výlučne v cytozole, alebo byť rozložený rovnomerne v oboch, ako je to u ľudí.[27] Transport PEP cezmitochondriálnu membránu sa dosahuje pomocou určených transportných proteínov, ale žiadne také enzýmy neexistujú preoxalacetát.[27] To znamená, že u druhov, ktoré nemajú PEPCK prítomnú v mitochondriách, je nutné premeniť oxalacetát namalát aleboaspartát, presunúť ho mimomitochondrie a potom premeniť znovu naspäť na oxalacetát, aby mohla glukoneogenéza pokračovať.[27]
Glukoneogenézová dráha s kľúčovými molekulami a enzýmami. Mnoho krokov je opačných oprotiglykolýze.
Glukoneogenéza je dráha pozostávajúca zo série 11 reakcií katalyzovaných enzýmami. Dráha začína v pečeni alebo obličke, presnejšie v mitochondrii alebo cytoplazme týchto buniek, čo záleží na použitom substráte. Mnoho reakcií je spätnými reakciamiglykolýzy.
Glukoneogenéza začina v mitochondrii vytvorením oxalacetátu pomocou karboxylácie pyruvátu. Táto reakcia vyžaduje jednu molekuluATP a je katalyzovanápyruvátkarboxylázou. Enzým je stimulovaný vysokou koncentráciouacetylkoenzýmu A (produkovaného vbeta oxidácii v pečeni) a inhibovaný vysokou koncentráciou ADP a glukózy.
Oxalacetát je redukovaný na malát za účastiNADH, čo je nutné na jeho presun mimo mitochondrie.
Malát je oxidovaný naspäť na oxalacetát pomocou NAD+ v cytozole, kde prebieha zvyšok glukoneogenézy.
Oxalacetát je dekarboxylovaný a potom fosforylovaný, čím vznikáfosfoenolpyruvát. Reakcie katalyzuje enzýmPEPCK. Počas reakcie sa hydrolyzuje molekulaGTP naGDP.
Ďalšie kroky sú spätné reakcie zglykolýzy, až po tvorbu fruktóza-1,6-bisfosfátu.Fruktóza-1,6-bisfosfát je premieňaný nafruktóza-6-fosfát enzýmomfruktóza-1,6-bisfosfatázou, ktorá využíva jednu molekulu vody a uvoľňuje jednu molekulu fosfátu (v glykolýze konvertuje premenu F6P na F1,6P enzýmfosfofruktokináza za súčasnej hydrolýzy ATP na ADP). Toto je rýchlosť určujúci krok (rate-limiting step) glukoneogenézy.
Glukóza-6-fosfát je tvorený z fruktóza-6-fosfátu pomocou fosfoglukoizomerázy (spätná reakcia druhého kroku glykolýzy). Glukóza-6-fosfát (G6P) môže byť využitá v iných metabolických dráhach alebo defosforylovaný na voľnú glukózu. Zatiaľ čo voľná glukóza môže difundovať do/z bunky, fosforylovaná forma (G6P) je však zadržaná v bunke (bunková membrána pre ňu nie je voľne priepustná). Pomocou tohto mechanizmu je bunkami udržiavaná vnútorná hladina glukózy.
Konečný krok glukoneogenézy, tvorba glukózy, prebieha vluméneendoplazmatického retikula, kde je glukóza-6-fosfát hydrolyzovanýglukóza-6-fosfatázou, čo produkuje glukózu a anorganický fosfát. Rovnako, ako dva kroky dozadu (premena F6P na G6P), ani tento krok nie je jednoduchou spätnou reakciou z glykolýzy, pri ktoromhexokináza katalyzuje konverziu glukózy a ATP na glukóza-6-fosfát a ADP. Glukóza je nakoniec presunutá do cytoplazmy pomocou glukózových transportérov, ktoré sa nachádzajú na membráne endoplazmatického retikula.
Zatiaľ čo väčšina krokov glukoneogenézy sú spätné reakcie glykolýzy, tri regulované a silne endergonické kroky sú nahradené reakciami, ktoré sú kineticky výhodnejšie. Enzýmyhexokináza/glukokináza,fosfofruktokináza apyruvátkináza, vystupujúce v glykolýze, sú nahradené enzýmamiglukóza-6-fosfátázou,fruktóza-1,6-bisfosfatázou aPEP karboxykinázou/pyruvátkarboxylázou. Tieto enzýmy sú typicky regulované podobnými molekulami, ale s opačnými výsledkami. Ako príklad,acetylkoenzým A acitrát aktivujú enzýmy glukoneogenézy (konkrétne, pyruvátkarboxylázu a fruktóza-1,6-bisfosfatázu) a zároveň inhibujú glykolytický enzýmpyruvátkinázu. Tento systém vzájomneho riadenia glykolýzy a glukoneogenézy inhibujúcich sa navzájom zabraňuje zbytočným cyklom syntézy a rozkladu glukózy. Pyruvátkinázu je možné obísť celkom 86 inými dráhami[28] nesúvisiacimi s glukoneogenézou za účelom syntézy pyruvátu a následne laktátu - niektoré z nich využívajú uhlíkové atómy pochádzajúce z glukózy.
Väčšina enzámov zodpovedných za glukoneogenézu sa nachádza v cytozole. Výnimkou jepyruvátkarboxyláza, prítomná v mitochondrii, a u zvieratPEP karboxykináza (PEPCK). PEPCK existuje akoizoenzým prítomný v mitochondrii aj cytozole.[29] Rýchlosť flukoneogenézy je udávaná pôsobením kľúčového enzýmu, fruktóza-1,6-bisfosfatázy, ktorá je zároveň regulovaná pomocou prenosu signálu vďakacAMP a jej fosforylácii.
Globálna regulácia glukoneogenézy je sprostredkovanáglukagónom (ktorý sa vylučuje pri nízkej hladine glukózy v krvi). Ten spôsobuje fosforyláciu enzýmov a regulačných proteínovproteínkinázou A (kináza regulovaná cyklickým AMP), čo vedie k inhibícii glykolýzy a stimulácii glukoneogenézy. Inzulín pôsobí proti glukagónu inhibíciou glukoneogenézy. Diabetes druhého typu je spôsobený nadbytkom glukagónu a odolnosťou tela voči inzulínu.[30] Inzulín nie je schopný inhibovať génovú expresiu enzýmov, ako napríklad PEPCK, čo vedie k zvýšenej hladine glukózy v krvi (hyperglykémii).[31] Antidiabetikum metformín znižuje hladinu glukózy primárne pomocou inhibície glukoneogenézy, čím prekonáva neschopnosť inzulínu inhibovať glukoneogenézu kvôli vzniknutej rezistencii na inzulín.[32]
Štúdie preukázali, že absencia heptálnej produkcie glukózy nemá významný efekt na riadenie koncentrácie glukózy v plazme počas hladovania. Kompenzačná indukcia glukoneogenézy prebieha v obličkách a črevách a je poháňanáglukagónom,glukokortikoidmi aacidózou.[33]
FOX proteín FoxO6 v pečeni bežne podporuje glukoneogenézu počas hladovania, ale inzulín blokuje FoxO6 po jedle.[34] V prípade inzulínovej rezistencie inzulín neblokuje FoxO6, čo má za následok glukoneogenézu i po jedlo, zapríčiňujúc hyperglykémiu (vysokú hladinu cukru v krvi).[34]
Inzulínová rezistencia je bežný prejav metabolického syndrómu a diabetu druhého typu. Z tohto dôvodu je glukoneogenéza cieľom terapie diabetu druhého typu, napríklad antidiabetikom metformínom, ktorý inhibuje glukoneogenickú tvorbu glukózy a stimuluje príjem glukózy bunkami.[35]
↑ Molecular signaling mechanisms of renal gluconeogenesis in nondiabetic and diabetic conditions.Journal of Cellular Physiology, June 2019, s.8134–8151.DOI:10.1002/jcp.27598.PMID 30370538.
123GARRETT, Reginald H.; GRISHAM, Charles M..Principles of Biochemistry with a Human Focus. USA: Brooks/Cole, Thomson Learning, 2002.ISBN978-0-03-097369-7. S.578, 585.
12 Regulation of hepatic glucose production and the role of gluconeogenesis in humans: is the rate of gluconeogenesis constant?.Diabetes/Metabolism Research and Reviews, September 2008, s.438–58.Dostupné online.DOI:10.1002/dmrr.863.PMID 18561209.
↑FERRIER, Denise R; CHAMPE, Pamela C; HARVEY, Richard A.Biochemistry (Lippincott's Illustrated Reviews). Hagerstwon, MD: Lippincott Williams & Wilkins, 1 August 2004.ISBN978-0-7817-2265-0. Kapitola 20. Amino Acid Degradation and Synthesis.
↑Nutritional ecology of the ruminant. 2nd. vyd. [s.l.]: Cornell Univ. Press., 1994. S.476.
↑ Bifunctional glyoxylate cycle protein of Caenorhabditis elegans: a developmentally regulated protein of intestine and muscle.Developmental Biology, June 1995, s.399–414.DOI:10.1006/dbio.1995.1156.PMID 7781887.
12 Evolution of glyoxylate cycle enzymes in Metazoa: evidence of multiple horizontal transfer events and pseudogene formation.Biology Direct, October 2006, s.31.DOI:10.1186/1745-6150-1-31.PMID 17059607.
↑ Conversion of fatty acids to carbohydrate; application of isotopes to this problem and role of the Krebs cycle as a synthetic pathway.Physiological Reviews, April 1957, s.252–72.DOI:10.1152/physrev.1957.37.2.252.PMID 13441426.
↑ Plasma acetone metabolism in the fasting human.The Journal of Clinical Investigation, April 1979, s.619–26.DOI:10.1172/JCI109344.PMID 438326.
12 A novel role for glucose 6-phosphatase in the small intestine in the control of glucose homeostasis.The Journal of Biological Chemistry, October 2004, s.44231–4.DOI:10.1074/jbc.R400011200.PMID 15302872.
↑ Role of the kidney in normal glucose homeostasis and in the hyperglycaemia of diabetes mellitus: therapeutic implications.Diabetic Medicine, February 2010, s.136–42.DOI:10.1111/j.1464-5491.2009.02894.x.PMID 20546255.
↑ Substrate utilization for hepatic gluconeogenesis is altered by increased glucose demand in ruminants.Journal of Animal Science, July 1999, s.1940–51.DOI:10.2527/1999.7771940x.PMID 10438042.
↑ Insulin and glucagon regulation of gluconeogenesis in preruminating and ruminating bovine.Journal of Animal Science, February 1995, s.546–51.DOI:10.2527/1995.732546x.PMID 7601789.
↑ Insulin and glucagon regulation of gluconeogenesis in preruminating and ruminating bovine.Journal of Animal Science, February 1995, s.546–51.DOI:10.2527/1995.732546x.PMID 7601789.
↑Christos Chinopoulos (2020), From Glucose to Lactate and Transiting Intermediates Through Mitochondria, Bypassing Pyruvate Kinase: Considerations for Cells Exhibiting Dimeric PKM2 or Otherwise Inhibited Kinase Activity,https://www.frontiersin.org/articles/10.3389/fphys.2020.543564/full
↑ Factors that control the tissue-specific transcription of the gene for phosphoenolpyruvate carboxykinase-C.Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology, 2005, s.129–54.DOI:10.1080/10409230590935479.PMID 15917397.
↑ Metformin and insulin suppress hepatic gluconeogenesis through phosphorylation of CREB binding protein.Cell, May 2009, s.635–46.DOI:10.1016/j.cell.2009.03.016.PMID 19450513.
↑ Insulin regulation of gluconeogenesis.Annals of the New York Academy of Sciences, January 2018, s.21–35.DOI:10.1111/nyas.13435.PMID 28868790.
↑ Expression profile analysis of long non-coding RNAs involved in the metformin-inhibited gluconeogenesis of primary mouse hepatocytes.International Journal of Molecular Medicine, January 2018, s.302–310.Dostupné online.DOI:10.3892/ijmm.2017.3243.PMID 29115403.
↑ Control of blood glucose in the absence of hepatic glucose production during prolonged fasting in mice: induction of renal and intestinal gluconeogenesis by glucagon.Diabetes, December 2011, s.3121–31.DOI:10.2337/db11-0571.PMID 22013018.
12 FoxO integration of insulin signaling with glucose and lipid metabolism.The Journal of Endocrinology, May 2017, s.R67–R79.DOI:10.1530/JOE-17-0002.PMID 28213398.