포도당(葡萄糖,영어:grape sugar) 또는글루코스(영어:glucose)는분자식이 C6H12O6인단당류이다.덱스트로스(영어:dextrose)라고도 한다. 포도당은탄수화물의 하위 범주로, 가장 풍부한 단당류이다.[4] 포도당은 주로식물과 대부분의조류에 의해 태양의빛에너지를 사용하여물과이산화 탄소로부터광합성을 하는 동안 만들어지며 자연에서 가장 풍부한 탄수화물인 식물세포벽의셀룰로스를 만드는 데 사용된다.[5][6][7]
에너지 대사에서 포도당은 모든생명체에서 가장 중요한 에너지원이다. 대사를 위한 포도당은중합체로 저장되며, 식물에서는 주로녹말(아밀로펙틴 및아밀로스)로, 동물에서는글리코젠으로 저장된다. 포도당은 동물의 혈액에서혈당으로 순환한다.[5][7] 자연적으로 생성되는 포도당의 형태는 D-포도당이며,L-포도당은 비교적 적은 양으로 합성되며 생물학적 활성이 낮다.[8] 포도당은 6개의 탄소 원자와카보닐기(알데하이드)를 포함하는 단당류로,알도헥소스이다. 포도당은 선형 또는 고리형으로 존재할 수 있다. 포도당은 자연적으로 생성되며 열매 및 식물의 다른 부위에서 유리된 상태로 발견된다. 동물에서 포도당은글리코젠 분해로 알려진 과정을 통해 글리코젠으로부터 방출된다.
포도당이라는 이름은 "포도주(wine)", "머스트(must)"라는 의미의그리스어γλεῦκος (gleûkos)와 "달콤한, 단(sweet)"이라는 의미의 그리스어γλυκύς (glykýs)로부터 유래되었다.[10][11] 접미사 "-ose"는 당을 나타내는 화학적 접미사이다.
포도당은 1747년에독일의 화학자안드레아스 지기스문트 마르크그라프에 의해건포도로부터 처음으로 분리되었다.[12][13] 포도당은 1792년에 또 다른 독일의 화학자인요한 토비아스 로비츠가포도에서 발견했으며, 사탕수수(수크로스)와 다른 것으로 구별되었다. 포도당은 1838년에장바티스트 뒤마가 만든 용어로 화학 문헌에서 널리 사용되었다.아우구스트 케쿨레는 덱스트로스("오른쪽"을 의미하는라틴어 "dexter"에서 유래)라는 용어를 제안했는데, 이는 포도당 수용액에서 선형 편광된 빛의 평면이 오른쪽으로 향하기 때문이다. 대조적으로 L-과당(케토헥소스)과 L-포도당은 선형으로 편광된 빛을 왼쪽으로 돌린다. 선형 편광면의 회전에 따른 이전 표기법(D- 및 L-표기법)은 나중에 카보닐기로부터 가장 멀리 떨어져 있는 비대칭 중심의절대배치를 나타내고 D- 또는 L-글리세르알데하이드의 입체배치와 일치하는 D- 및 L-표기법을 선호하여 폐기되었다.[14][15]
포도당은 많은생물체들이 기본적으로 필요로 하기 때문에 그화학적 구성과 구조에 대한 올바른 이해는유기화학의 발전에 크게 기여했다. 이러한 이해는 1902년에노벨 화학상을 수상한 독일의 화학자에밀 피셔의 연구 결과로 크게 증진되었다.[16] 포도당의 합성은 유기 화합물의 구조를 확립하는 데 기여했고, 결과적으로야코뷔스 헨리퀴스 반트호프의화학 반응속도론과 탄소 함유 분자의화학 결합의 배열에 대한 최초의 결정적인 검증을 가능하게 했다.[17] 1891년에서 1894년 사이에 피셔는 알려진 모든 당들의 입체화학적입체배치를 규명하고 반트호프의 비대칭 탄소 원자 이론을 적용하여 가능한이성질체들을 정확하게 예측했다. 이들 이름은 처음에 천연 물질들을 지칭했다. 이들의거울상 이성질체는 절대 입체화학을 고려하여 계통적 명명법(예: 피셔 명명법, D/L 명명법)을 도입하여 동일한 이름을 부여했다.
포도당은물과아세트산에 잘녹지만메탄올과에탄올에는 잘 녹지 않는 흰색 또는 무색의 고체이다. 포도당은146°C (295°F) (α) 및150°C (302°F) (β)에서 녹고 다양한 휘발성 생성물을 방출하면서188°C (370°F)부터분해되기 시작하여 궁극적으로탄소 잔류물을 남긴다.[25] 포도당은25°C (77°F)의 물에서 pKa 값이 12.16이다.[26]
포도당은 6개의 탄소 원자를 가지고 있으며단당류의 하위 범위인육탄당으로 분류된다. D-포도당은 16가지의알도헥소스입체 이성질체들 중 하나이다. 덱스트로스라고도 알려진 D-이성질체인 D-포도당은 자연에서 널리 발견되지만 L-이성질체인L-포도당은 그렇지 않다. 포도당은젖당, 설탕(수크로스),엿당,셀룰로스,글리코젠 등과 같은탄수화물의가수분해에 의해 얻을 수 있다. 포도당은 일반적으로 미국과 일본에서는 옥수수 녹말, 유럽에서는 감자 녹말과 밀 녹말, 열대 지역에서는타피오카 녹말로 상업적으로 제조된다.[27] 제조 공정은 제트에서 제어된pH에서 가압 스팀을 통한 가수분해에 이어 추가적인 효소 해중합을 사용한다.[28] 결합되지 않은 포도당은꿀의 주요 성분 중 하나이다.[29][30][31][32][33]
"덱스트로스(dextrose)"라는 용어는 임상적(환자의 건강 상태와 관련됨) 또는 영양학적 맥락(식품 라벨 또는 식이 지침과 같은 식이 섭취와 관련된)에서 자주 사용되는 반면, "글루코스(glucose)"라는 용어는 생물학적 또는 생리학적 맥락(화학적 과정 및 분자 상호작용)에서 사용되며,[34][35][36][37] 이때는 모두 동일한 분자, 특히 D-글루코스를 나타낸다.[36][38]
덱스트로스 일수화물(dextrose monohydrate)은 D-포도당의 수화된 형태로, 이는 추가적인 물 분자가 부착된 포도당 분자임을 의미한다.[39] 덱스트로스 일수화물의화학식은C 6H 12O 6·H 2O이다.[39][40] 덱스트로스 일수화물은 수화된 D-포도당(hydrated D-glucose)이라고도 하며, 일반적으로옥수수 녹말이나감자 녹말과 같은 식물성 녹말로부터 제조된다.[39][41] 덱스트로스 일수화물은 음료 혼합물과 같은 식품 응용 분야에서 주요 유형의 포도당으로 활용된다. 이는 식품 생산에서 영양 보충제로 널리 사용되는 일반적인 형태의 포도당이다. 덱스트로스 일수화물은 주로 북미에서 옥수수 시럽 또는고과당 옥수수 시럽으로 소비된다.[36]
반면, 무수 덱스트로스(anhydrous dextrose)는 물 분자가 결합되어 있지 않은 포도당이다.[41][42] 무수 화합물은 일반적으로 수화물을 가열하거나 건조하는 등의 방법을 통해 수분을 제거하여 생산한다.[43][44][45] 덱스트로스 일수화물은 산업적 환경에서 무수 덱스트로스로 탈수될 수 있다.[46][47] 덱스트로스 일수화물은 질량 기준으로 약 9.5%의 물로 구성된다. 탈수 과정을 통해 이와 같은 수분 함량이 제거되어 무수(건조) 포도당이 생성된다.[41]
무수 덱스트로스는 포도당과 동일하게 물 분자가 부착되지 않은 화학식C 6H 12O 6을 갖는다.[39] 야외에서 무수 덱스트로스는 수분을 흡수하여 일수화물로 전환되는 경향이 있으며, 무수 덱스트로스의 생산 비용이 더 비싸다.[41] 무수 덱스트로스(무수 D-포도당)은 안정성이 증가되었고 유통 기한이 증가되었으며,[44] 경구포도당 부하 검사(OGTT)와 같은 의학적 용도로 사용된다.[48]
D-포도당 일수화물의분자량은 198.17 g/mol인 반면,[49][50] 무수 D-포도당의 분자량은 180.16 g/mol이다.[51][52][53] 이 두 가지 형태의 포도당의 밀도도 또한 다르다.
화학 구조상 포도당은 6개의 탄소 원자와카보닐기(알데하이드)를 가지고 있는단당류이기 때문에알도헥소스이다. 포도당은 열린 사슬 형태(비고리 형태) 및 고리 형태로 존재할 수 있다. 이는하이드록실기(알코올) 또는 카보닐기(알데하이드 또는케톤)의 존재로 인해 곧은 사슬을 갖는 형태는탄수화물에서 흔히 발견되는 의자 모양의헤미아세탈 고리 구조로 쉽게 전환될 수 있다.[54]
포도당은 일반적으로 닫힌피란 고리가 있는일수화물(포도당 수화물)로 고체 형태로 존재한다. 반면에 수용액에서는 소량이 열린 사슬 형태로 존재하며 상호변환되는 α-피라노스 또는 β-피라노스로 주로 존재한다. 수용액에서 세 가지 알려진 형태인 α-글루코피라노스, β-글루코피라노스 및 α-글루코피라노스 수화물을 결정화할 수 있다.[55] 포도당은젖당과설탕(사탕수수 또는 사탕무의 당)과 같은이당류,라피노스와 같은올리고당류,녹말(아밀로스 및아밀로펙틴),글리코젠,셀룰로스와 같은다당류의 구성 요소이다. 포도당의유리 전이 온도는31°C (88°F)이고 고든-테일러 상수(두 물질의 혼합물의 서로 다른 질량 분율에 대한 유리 전이 온도 예측을 위해 실험적으로 결정된 상수)는[56] 4.5이다.[57]
열린 사슬 형태의 포도당은 수용액에서 전체 포도당의 0.02% 미만을 차지한다.[58] 나머지는 두 가지 고리형헤미아세탈 형태 중 하나이다.열린 사슬형에서 포도당은 6개의 탄소 원자로 구성된 열린 사슬형(고리형과 반대)의 가지가 없는 골격을 가지고 있으며, 여기서 1번 탄소(C1)는카보닐기(알데하이드,H(C=O)−)의 탄소이다. 따라서 포도당은알도스 또는알도헥소스로 분류된다. 카보닐기(알데하이드)는 포도당을환원당으로 만들어펠링 반응에서 양성 반응을 보이게 한다.
용액에서 포도당의 열린 사슬형(D- 또는 L-)은 각각 하나의 산소 원자에 의해 닫힌 탄소 고리를 포함하는 여러 고리형 이성질체들과 평형 상태로 존재한다. 그러나 수용액에서는 포도당의 99% 이상이 피라노스 형태로 존재한다. 열린 사슬 형태는 약 0.25%로 제한되며푸라노스 형태는 무시할 수 있는 양으로 존재한다. "포도당" 및 "D-포도당"이라는 용어는 일반적으로 이러한 고리 형태에서도 사용된다. 고리는 카보닐기(알데하이드, C1)과 C4 또는 C5의 하이드록실기 사이의 분자 내친핵성 첨가 반응에 의해 열린 사슬 형태로부터헤미아세탈 결합(−C(OH)H−O−)을 형성함으로써 만들어진다.
C1과 C5 사이의 반응은 유도된피란 골격을 포함하는 단당류인피라노스라고 하는 6원자헤테로고리를 생성한다. C1과 C4 사이의 훨씬 더 드문 반응은 사이클릭 에터인푸란의 이름을 따서 명명된 5원자푸라노스 고리를 생성한다. 두 경우 모두 고리의 각 탄소에는(마지막 탄소인 C4 또는 C5는 제외) 1개의 수소 원자와 1개의 하이드록실기가 부착되어 있다. 마지막 탄소인 C4 또는 C5를 제외하고 하이드록실기가 열린 분자의 나머지 부분(각각−(C(CH 2OH)HOH)−H 또는−(CHOH)−H) 으로 대체된다.
고리 닫힘 반응은 "α-" 및 "β-"로 표시된 두 가지 생성물을 생성할 수 있다. 글루코피라노스 분자를하워스 투영식으로 그릴 때 "α-"는 C1의 하이드록실기와 C5의−CH 2OH기가 고리 평면의 반대쪽에 있음을 의미하고(트랜스 배열), "β-"는 C1의 하이드록실기와 C5의−CH 2OH가 고리 평면의 같은 쪽에 있다는 것을 의미(시스 배열)한다. 따라서 열린 사슬 이성질체인 D-포도당은 α-D-글루코피라노스, β-D-글루코피라노스, α-D-글루코푸라노스, β-D-글루코푸라노스의 4가지 별개의 고리형 이성질체를 생성한다. 이들 5가지 구조는 평형 상태로 존재하며 상호전환되며, 이러한 상호전환은 산촉매의 작용 하에서 보다 더 빠르게 일어난다.
D-글루코피라노스의 α-아노머 및 and β-아노머 사이의 산-촉매 동적 평형을 위해 널리 제안된 화살-밀기 메커니즘
다른 열린 사슬 이성질체인 L-포도당은 마찬가지로 L-포도당의 4가지 고리 형태를 생성하며 각각은 해당하는 D-포도당의 거울상 이성질체이다.
글루코피라노스 고리(α 또는 β)는사이클로헥세인의 "의자형" 및 "보트형"입체구조와 유사한 여러 비평면 모양을 가정할 수 있다. 유사하게 글루코푸라노스 고리는사이클로펜테인의 "봉투형" 입체구조와 유사한 여러 모양을 가정할 수 있다.
고체 상태에서는 글루코피라노스 형태만 관찰된다.
1,2-O-아이소프로필리덴-D-글루코푸라노스와 같은 글루코푸라노스의 일부 유도체는 안정적이며 순수한 결정질 고체로 얻을 수 있다.[59][60] 예를 들어 α-D-글루코스와 파라-톨릴보론산(H 3C−(C 6H 4)−B(OH) 2)의 반응은 정상적인 피라노스 고리를 재형성하여 4-폴드 에스터 α-D-글루코푸라노스 1,2:3,5-비스(p-톨릴보론산염)을 생성한다.[61]
포도당의 변광회전: D-포도당 분자는 서로에 대해 에피머(=부분 입체 이성질체)인 고리형 헤미아세탈로 존재한다. α:β 에피머의 비율은 36:64이다. α-D-글루코피라노스(왼쪽)에서 파란색으로 표시된 하이드록실기는 아노머 중심의 축 위치에 있는 반면 β-D-글루코피라노스(오른쪽)에서 파란색으로 표시된 하이드록실기는 아노머 중심의 적도 위치에 있다.
변광회전은 고리 형성 반응의 일시적인 역전으로 구성되며, 열린 사슬 형태로 전환된 다음 고리가 다시 형성된다. 고리 닫힘 단계는 열린 단계에서 재형성된 것과 다른 하이드록실기를 사용(따라서 피라노스와 푸라노스 형태 사이의 전환)하거나 C1에서 생성된 새로운 헤미아세탈은 원래의작용기와 동일하거나 반대 방향(따라서 α 형태와 β 형태 사이의 전환)일 수 있다. 따라서 열린 사슬 형태는 용액에서 거의 탐지할 수 없지만 평형의 필수 구성 요소이다.
열린 사슬 형태는열역학적으로 불안정하며 자발적으로 고리 형태로이성질화된다. 고리 닫힘 반응은 이론적으로 4원자 또는 3원자 고리를 형성할 수 있지만, 이러한 고리는 긴장도가 매우 높기 때문에 실제로 관찰되지는 않는다.실온의 용액에서 4가지 고리형 이성질체는변광회전이라고 불리는 과정에서 시간 단위로 상호전환된다.[62] 어떤 비율에서 시작하더라도 혼합물은 α:β가 36:64의 안정적인 비율로 수렴한다.아노머 효과의 영향이 없다면 α:β의 비율은 11:89가 된다.[63] 변광회전은0°C (32°F)에 가까운 온도에서 상당히 느려진다.
물에 있든 고체 형태로 존재하는 D-(+)-포도당은 우선성이다. 즉, 광원을 바라볼 때편광의 방향을 시계 방향으로 회전시킨다. 이 효과는 분자의카이랄성 때문이며 실제로 거울상 이성질체인 L-(−)-포도당은 같은 양만큼 좌선성(편광을 시계 반대 방향으로 회전시킴)이다. 효과의 강도는 5가지호변 이성질체 각각에 대해 다르다.
D-접두사는 화합물의 광학 특성을 직접적으로 나타내지 않음에 유의해야 한다. 이것은 C5 카이랄 중심이D-글리세르알데하이드(우선성이기 때문에 이렇게 표시됨)와 동일한 선성을 가짐을 나타낸다. D-포도당이 우선성이라는 사실은 C5 뿐만 아니라 4개의 카이랄 중심에 결합된 효과이다. 실제로 다른 D-알도헥소스 중 일부는 좌선성이다.
순수한 α-D-포도당은 +112.2° mL/(dm·g)의 특정 회전각을 갖고 순수한 β-D-포도당은 +17.5° mL/(dm·g)의 특정 회전각을 갖고 있기 때문에 두아노머 사이의 전환은편광계에서 관찰할 수 있다.[64] 변광회전으로 인해 일정 시간이 지난 후 평형에 도달하면 회전각은 +52.7° mL/(dm·g)가 된다.[64] 산이나 염기를 추가하면 이러한 전환은 보다 더 가속화된다. 평형은 열린 사슬 알데하이드 형태를 통해 일어난다.
포도당은 가장 풍부한단당류이다. 포도당은 또한 대부분의 살아 있는생물에서 가장 널리 사용되는알도헥소스이다. 이에 대한 한 가지 가능한 설명은 포도당이 다른 알도헥소스보다단백질의아미노기와 비특이적으로 반응하는 경향이 낮다는 것이다.[65] 이 반응(당화)은 많은 단백질(예:당화 헤모글로빈)의 기능을 손상시키거나 파괴한다.[65] 포도당의 낮은 당화율은 다른 알도헥소스에 비해 더 안정적인 고리 형태를 가지고 있기 때문일 수 있다. 즉, 반응성 열린 사슬 형태보다 더 적은 시간을 소비한다.[65] 포도당이 모든 알도헥소스 중에서 가장 안정적인 고리형을 갖는 이유는하이드록실기(D-포도당의 아노머 탄소에 있는 하이드록실기는 제외)가 적도 위치에 있기 때문이다. 아마도 포도당은 다른 단당류보다 단백질에 덜 당화되기 때문에 가장 풍부한 천연 단당류이다.[65][66] 또 다른 가설은 β-D-포도당의 형태로 적도 위치에 5개의하이드록실치환기를 모두 갖는 유일한 D-알도헥소스인 포도당이에스터화[67] 또는아세탈 형성[68]과 같은화학 반응[69]에 더 쉽게 접근할 수 있다는 것이다. 이러한 이유로 D-포도당은 천연 다당류(글리칸)에서 매우 선호되는 구성 요소이기도 하다. 포도당만으로 구성된 다당류를글루칸이라고 한다.
포도당은 식물이 햇빛, 물, 이산화 탄소를 이용한광합성을 통해 생산되며[70][71] 모든 생명체가 에너지원 및 탄소원으로 사용할 수 있다. 그러나 대부분의 포도당은 유리된 형태로 존재하지 않고 에너지 저장 물질인젖당,설탕,녹말 및식물세포벽의 구성 요소인셀룰로스,균류의 세포벽 및절지동물의외골격의 구성 요소인키틴의 형태로 존재한다.동물, 균류 및세균에 의해 섭취될 때 이러한중합체는효소를 사용하여 포도당으로 분해된다. 모든 동물은 또한 필요에 따라 특정 전구체로부터 포도당을 스스로 생성할 수 있다.뉴런,콩팥 속질 세포,적혈구는 에너지 생성을 위해 포도당에 의존한다.[71] 성인의 경우 약18g (0.63oz)의 포도당이 있으며,[72] 그 중 약4g (0.14oz)은혈액에 존재한다.[73] 약180–220g (6.3–7.8oz)의 포도당이 성인의간에서 24시간 동안 생성된다.[72]
섭취된 포도당은 처음에 사람의 혀에 있는 단맛 수용체에 결합한다. 단백질TAS1R2 및TAS1R3의 복합체는 포도당 함유 식품 공급원을 식별할 수 있게 한다.[76][77] 포도당은 주로 음식물로부터 공급되며 하루에 약300g (11oz)이 음식물의 전환에 의해 생성되지만[77] 신체 세포의 다른대사 산물로부터도 합성된다. 사람의 경우 포도당 함유 다당류의 분해는 부분적으로 이미씹는 동안타액에 포함된아밀레이스에 의해 일어나며, 뿐만 아니라소장의솔가장자리에 있는말테이스,락테이스,수크레이스에 의해 분해된다. 포도당은 많은 탄수화물들의 구성 요소이며 특정 효소를 사용하여 분리할 수 있다.글리코시데이스의 하위 부류인글루코시데이스는 먼저 포도당을 함유한 긴 사슬의 다당류의 가수분해를 촉매하여 말단 포도당을 절단한다. 차례로 이당류는 대부분 특정 글리코시데이스에 의해 포도당으로 분해된다. 분해 효소의 이름은 보통 특정 다당류 및 이당류의 이름으로부터 파생된다. 특히다당류를 분해하는효소에는아밀레이스(녹말의 성분인아밀로스에서 이름을 따서 명명됨),셀룰레이스(셀룰로스에서 이름을 따서 명명됨),키티네이스(키틴에서 이름을 따서 명명됨) 등이 있다. 또한, 이당류를 분해하는 효소에는 말테이스, 락테이스, 수크레이스,트레할레이스 등이 있다. 사람에서 글리코시데이스를 암호화하는 약 70가지의 유전자가 알려져 있다. 이들은 글리코젠,스핑고지질,뮤코다당류 및 폴리(ADP-리보스)의 소화 및 분해 기능을 가지고 있다.사람은 셀룰레이스, 키티네이스, 트레할레이스를 생성할 수 없지만 사람의장내 미생물군에 있는세균은 생성할 수 있다.
식물과 일부원핵생물에서 포도당은광합성의 산물이다.[88] 포도당은 또한글리코젠(동물 및버섯의 경우) 또는 녹말(식물의 경우)과 같은 포도당의 중합체가 분해되어 생성된다. 글리코젠이 분해되는 것을글리코젠 분해라고 하며 녹말이 분해되는 것을 녹말 분해라고 한다.[89]
2~4개의 탄소 원자(C)를 포함하는 분자로 시작하여 6개의 탄소 원자를 포함하는 포도당 분자에서 끝나는 대사 경로를포도당신생합성이라고 하며, 살아 있는 모든 생물에서 일어난다. 더 작은 시작 물질은 다른 대사 경로의 결과물이다. 궁극적으로 거의 모든생체분자는 식물과 미생물에 의한 광합성 동안 이산화 탄소의 동화로부터 생성된다.[67] α-D-포도당 형성의 자유 에너지는 몰당 917.2 kJ이다.[67] 사람의 경우 포도당신생합성은간과콩팥에서 일어나지만[90] 다른 유형의 세포에서도 일어난다. 간에는 약150g (5.3oz)의 글리코젠이 저장되고 골격근에는 약250g (8.8oz)의 글리코젠이 저장된다.[91] 그러나 글리코젠이 분해되어 근육세포에서 방출된 포도당은헥소키네이스에 의해 포도당이인산화되고인산기를 제거하는포도당 6-인산가수분해효소가발현되지 않아 순환계로 전달되지 못한다. 포도당과는 달리포도당 6-인산에 대한 수송 단백질은 존재하지 않는다. 포도당신생합성은 생물이 에너지를 소비하면서젖산이나 특정아미노산을 포함한 다른 대사 산물로부터 포도당을 축적할 수 있게 한다. 신세뇨관 세포도 또한 포도당을 생성할 수 있다.
포도당은 또한 주변 환경에서 살아 있는 생물체의 외부에서 찾을 수 있다. 대기 중의 포도당 농도는 항공기에 의한 샘플 수집을 통해 감지되며 위치에 따라 다른 것으로 알려져 있다. 예를 들어, 중국 내륙의 대기 중 포도당 농도는 0.8~20.1 pg/L인 반면, 중국 동해안의 포도당 농도는10.3~142 pg/L이다.[92]
사람에서 포도당은해당과정[93]과오탄당 인산 경로[94]에 의해 대사된다. 해당과정은 약간의 차이가 있지만 모든 살아 있는 생물에 의해 사용되며,[69][95] 모든 생물은 단당류의 분해로부터 에너지를 생성한다.[95] 물질대사의 추가적인 과정에서산화적 탈카복실화,시트르산 회로 및전자전달계를 통해 물과 이산화 탄소로 완전히 분해될 수 있다. 이를 위한 산소가 충분하지 않으면 동물의 포도당 분해는 젖산 발효를 통해 혐기적으로 젖산을 생성하고 산소 호흡에 비해 훨씬 더 적은 에너지를 방출한다. 포유류에서 근육의 젖산은 혈류를 통해 포도당신생합성이 일어나는 간으로 들어간다(코리 회로). 포도당의 공급량이 많으면 시트르산 회로의 대사 산물인아세틸-CoA도지방산 합성에 사용될 수 있다.[96] 포도당은 간과 골격근에서 글리코젠의 저장량을 보충하는 데에도 사용된다. 이러한 과정은호르몬으로 조절된다.
다른 살아 있는 생물에서는 다른 형태의발효가 일어날 수 있다. 세균인대장균은 포도당이 유일한 탄소원인 영양 배지에서 자랄 수 있다.[67] 일부세균과고세균에서 포도당은엔트너-듀도로프 경로를 통해 분해된다.[97]
세포에서 포도당은 호기성 호흡, 혐기성 호흡 또는 발효에 의해 에너지원으로 사용된다.[98] 해당과정의 첫 번째 단계는헥소키네이스에 의한 포도당의인산화로포도당 6-인산을 생성하는 것이다. 포도당이 즉시 인산화되는 주된 이유는 하전된인산기가 포도당 6-인산이세포막을 쉽게 통과하는 것을 방지하기 때문에 세포 밖으로 확산되는 것을 막기 위함이다.[99] 또한 고에너지 인산기의 첨가는 포도당을활성화시키고 이는 해당과정의 나중 단계에서 후속적인 분해를 하기 위함이다.[100]생리학적 조건에서 이 초기 반응은 비가역적이다.
혐기성 호흡에서 1분자의 포도당은 2분자의 ATP를 순생성한다. 해당과정 동안 4분자의 ATP가 기질수준 인산화에 의해 생성되지만 2분자의 ATP는 해당과정의 에너지 투자기에서 소모된다.[101] 1분자의 포도당이 호기성 호흡에 사용되면 해당과정에서 기질수준 인산화로 2분자의 ATP, 시트르산 회로에서 기질수준 인산화로 2분자의 ATP, 산화적 인산화에서 최대 28분자의 ATP가 생성되므로 최대 총 32분자의 ATP가 생성된다는 점에서 혐기성 호흡보다 훨씬 더 효율적이다.[102]
종양 세포는 비교적 빠르게 생장하고 산소가 있는 경우에도 포유동물에서 발효의 최종 생성물인 젖산을 생성하는 해당과정에 의해 평균 이상의 양의 포도당을 소비한다.[103] 이를바르부르크 효과라고 한다. 종양에서 증가되는 포도당의 흡수를 위해 다양한 SGLT 및 GLUT가 과도하게 생성된다.[104][105]
효모에서 에탄올은 산소가 있는 경우에도 포도당의 농도가 높을 경우에 발효될 수 있다(일반적으로 발효보다는 산소 호흡으로 이어짐). 이를크랩트리 효과라고 한다.
포도당은 또한 비생물적 수단을 통해 분해되어 이산화 탄소를 생성할 수 있다. 이는 22 °C 및 pH 2.5에서 산화 및 가수분해를 통해 실험적으로 일어나는 것으로 입증되었다.[106]
포도당 분해에서 가능한대사 중간생성물을 보여주는 도표. 주황색 대사 경로: 해당과정, 녹색: 엔트너-듀도로프 경로(인산화), 노란색: 엔트너-듀도로프 경로(비인산화)
포도당은생물학에서 생물의 보편적인 에너지원이다. 포도당은호기성 호흡,혐기성 호흡 또는발효를 통해 세균에서 사람에 이르기까지 생물체의 에너지원으로 사용된다. 포도당은 호기성 호흡을 통해 그램 당 약 3.75kcal (16 kJ)의 에너지를 제공하는 인체의 주요 에너지원이다.[107] 탄수화물(예: 녹말)을 분해하면단당류와이당류가 생성되며, 이들 분해 산물의 대부분은 포도당이다.해당과정과 이후에 일어나는시트르산 회로 및산화적 인산화를 통해 포도당은산화되어 결국이산화 탄소와물을 생성하고ATP와 열에너지의 형태로 에너지를 생성한다. 인슐린 및 기타 메커니즘은 혈액 내 포도당의 농도를 조절한다. 포도당의 생리학적 열량은 공급원에 따라 다르지만 16.2 kJ/g[108] 또는 15.7 kJ/g (3.74 kcal/g)이다.[109] 식물의바이오매스에서 탄수화물의 높은 이용 가능성은 진화하는 동안 특히 미생물에서 에너지 및 탄소 저장을 위한 포도당을 활용하기 위해 다양한 방법으로 이어졌다. 이들은 최종 산물을 더 이상 에너지 생성에 사용할 수 없다는 점에서 차이가 있다. 개별 유전자의 존재와 이들 유전자의 산물인 효소가 어떤 반응이 가능한 지를 결정한다. 거의 모든 생물체가 해당과정을 사용한다. 해당과정 사용의 본질적인 차이점은 그렇지 않으면 간접적으로 생성되어야 하는동화작용에 대한환원제로서NADPH의 회복이다.[110]
포도당과 산소는뇌에 거의 모든 에너지를 공급하기 때문에[111] 그 이용 가능성은심리적 과정에 영향을 미친다.포도당 농도가 낮으면 정신적 노력이 필요한 심리적 과정(예:자기 조절, 노력이 필요한 의사 결정)이 손상된다.[112][113][114][115] 주요 에너지원으로 포도당을 사용하는 뇌에서 포도당의 농도는 보통 4~6 mM (5 mM은 90 mg/dL과 같음)이지만[72] 단식시에는 2~3 mM로 감소한다.[116]혼란은 1mM 미만에서 일어나고혼수 상태는 낮은 수준에서 일어난다.[116]
혈액 속에 있는 포도당을혈당이라고 한다.혈당량은시상하부의 포도당 결합 신경 세포에 의해 조절된다.[117] 또한 뇌의 포도당은측좌핵에 있는보상 시스템의 포도당 수용체에 결합한다.[117] 혀의 단맛 수용체에 포도당이 결합하면 포도당 또는 다른 당을 통해 다양한 에너지 대사 호르몬의 방출을 유도하여 세포 흡수를 증가시키고 혈당량을 낮춘다.[118]인공 감미료는 혈당량을 낮추지 않는다.[118]
단기간 단식 상태에 있는 건강한 사람의 혈당 함량, 예를 들어 하룻밤 금식 후는 약 70~100 mg/dL (4~5.5 mM)이다.혈장에서 측정된 값은 약 10~15% 더 높다. 또한모세혈관을 통과하는 동안 포도당이 조직으로 흡수되기 때문에동맥혈의 혈당 농도가정맥혈의 혈당 농도보다 높다. 또한 혈당을 결정하는 데 자주 사용되는 모세혈에서 때때로 값이 정맥혈보다 더 높다. 혈액의 포도당 함량은인슐린,인크레틴,글루카곤과 같은 호르몬에 의해 조절된다.[117][119] 인슐린은 포도당 수치를 낮추고 글루카곤은 이를 증가시킨다.[72] 또한,에피네프린,티록신,당질 코르티코이드,소마토트로핀 및부신겉질 자극호르몬과 같은 호르몬은 포도당 수치를 증가시킨다.[72] 포도당 자동조절이라고 하는 호르몬의 독립적인 조절도 있다.[120] 음식을 섭취하면 혈당 농도가 증가한다. 정맥 전혈에서 180 mg/dL 이상의 값은고혈당증이라고 하며, 40 mg/dL 미만의 값은저혈당증이라고 한다.[121] 포도당은 필요할 때 간과 콩팥의 글리코젠에서 유래한포도당 6-인산으로부터포도당 6-인산가수분해효소에 의해 혈류로 방출되어 혈당 농도의항상성을 조절한다.[90][71]반추동물에서는 탄수화물의 장내 미생물에 의해짧은 사슬 지방산으로 더 많이 전환되기 때문에 혈당의 농도가 더 낮다(소의 경우 60 mg/dL,양의 경우 40 mg/dL).[122]
일부 포도당은성상세포에 의해젖산으로 전환된 다음 뇌세포에서 에너지원으로 활용된다. 일부 포도당은 장세포와적혈구에서 사용되고 나머지는간,지방 조직 및근육 세포에 도달하여 흡수되어 글리코젠으로 저장된다(인슐린의 영향 하에서). 간세포의 글리코젠은 포도당으로 전환될 수 있으며, 인슐린이 낮거나 없을 때 포도당은 혈액으로 되돌아간다. 근육 세포의 글리코젠은 효소 부족으로 인해 분해되어 혈액으로 되돌아가지 않는다.지방 세포에서 포도당은 일부 유형의 지방을 합성하고 다른 목적을 갖는 반응을 일으키는 데 사용된다. 신체는 포도당을 글리코젠의 형태로 저장한다. 이는 글리코젠이 훨씬 더 "공간 효율적"이고 포도당보다 반응성이 낮기 때문이다.
인체의 건강에서 포도당의 중요성 때문에 포도당은 일반적인혈액 검사인포도당 검사의분석물이다.[123] 혈액 샘플을 채취하기 전에 먹거나 금식하면 혈액 내 포도당 분석에 영향을 미칠 수 있다. 높은 공복혈당 수치는당뇨병 전단계 또는당뇨병의 징후일 수 있다.[124]
혈당 지수는 섭취한 탄수화물의 재흡수 및 혈당량으로의 전환 속도를 나타내는 지표이며, 포도당(포도당은 100으로 정의됨)과 비교하여 소비 후 혈당곡선의 아래에서 측정된다.[125] 지방 함량이 높은 식품(예: 아이스크림)은 탄수화물의 재흡수를 늦추고 혈당 지수를 낮추기 때문에[126] 혈당 지수의 임상적 중요성은 논란의 여지가 있다.[125][126] 대체 지표는 탄수화물 소비가 혈중 인슐린 수치에 미치는 영향으로 측정되는인슐린 지수이다.[127]혈당 부하는 혈당 지수와 섭취한 음식을 양을 기준으로 소비 후 혈당량에 추가된 포도당의 양을 나타내는 지표이다.
생물체는 몇 가지 중요한 물질을 합성하기 위한 전구체로 포도당을 사용한다.녹말,셀룰로스,글리코젠은 포도당의 일반적인중합체(다당류)이다. 이러한 중합체 중 일부(녹말 또는 글리코젠)는 에너지 저장의 역할을 하는 반면, 다른 중합체(셀룰로스 및 포도당의 유도체로부터 만들어지는키틴)은 구조적인 역할을 한다. 다른 당과 결합된 포도당의 화합물은 에너지 저장에 중요한 역할을 한다. 여기에는 포도당과 갈락토스로 구성된 이당류로 우유의 주요 당인 젖당 및 포도당과 과당으로 구성된 또 다른 이당류인 설탕(수크로스)이 포함된다. 포도당은 또한글리코실화라고 불리는 과정에서 특정단백질과지질에 첨가된다. 이것은 종종 기능에 있어서 중요하다. 포도당을 다른 분자에 결합시키는 효소는 일반적으로인산화된 포도당을 사용하여 포도당-인 결합의 파괴와 짝지어져 새로운 결합의 형성을 강화한다.
포도당은 단량체로 직접 사용되는 것 외에도 다양한 다른생체분자를 합성하기 위해 분해될 수 있다. 이것은 포도당이 에너지의 주요 저장원이자 유기 탄소의 공급원으로 역할을 하기 때문에 중요하다. 포도당은 분해되어지질로 전환될 수 있다. 또한 포도당은비타민 C(아스코르브산)와 같은 다른 중요한 분자의 합성을 위한전구체이기도 하다. 살아 있는 생물에서 포도당은 다양한대사 경로의 출발 물질인 몇 가지 다른 화합물로 전환된다. 그 중에서과당(폴리올 경로를 통해),[79]만노스(2번 탄소에서 포도당의에피머),갈락토스(4번 탄소에서 포도당의 에피머),푸코스, 다양한우론산 및아미노당과 같은 다른 모든 단당류[128]는 포도당으로부터 생성된다.[82] 해당과정의 일부인 포도당 6-인산으로의 인산화 외에도, 포도당은 글루코노-1,5-락톤으로 분해되는 동안 산화될 수 있다. 포도당은 일부 세균에서트레할로스 또는덱스트란 생합성의 빌딩 블록으로 사용되며 동물에서는 글리코젠의 빌딩 블록으로 사용된다. 포도당은 또한 세균의자일로스 이성질화효소에 의해 과당으로 전환될 수 있다. 또한 포도당의대사 산물은 모든 비필수 아미노산,만니톨 및소르비톨과 같은당알코올,지방산,콜레스테롤,핵산을 생성한다.[128] 마지막으로 포도당은 단백질을당단백질,당지질,펩티도글리칸,글리코사이드 및 기타 물질(글리코실기전이효소에 의해 촉매됨)로글리코실화시키는 구성 요소로 사용되며글리코시데이스에 의해 분해될 수 있다.
당뇨병은 체내 인슐린이 부족하거나 체내 세포가 인슐린에 적절하게 반응하지 못하기 때문에 신체가혈중 포도당 수치를 조절할 수 없는 대사 장애이다. 이러한 각각의 상황은 이자 소진 및인슐린 저항성을 통해 지속적으로 혈당량의 높은 상승으로 인해 일어날 수 있다.이자는호르몬인인슐린과글루카곤의 분비를 담당하는 기관이다.[129] 인슐린은 포도당의 수준을 조절하는 호르몬으로, 신체의 세포가 포도당을 흡수하고 사용할 수 있도록 한다. 인슐린이 없이는 포도당이 세포로 들어갈 수 없기 때문에 신체 기능을 위한 에너지원으로 포도당을 사용할 수 없다.[130] 이자가 지속적으로 높은 혈당량에 노출되면 이자의인슐린 생성 세포가 손상되어 체내 인슐린의 부족을 유발할 수 있다. 인슐린 저항성은 이자가 지속적으로 상승된 혈당량에 반응하여 점점 더 많은 인슐린을 생성하려고 할 때 일어난다. 결국 신체의 나머지 부분은 이자가 생산하는 인슐린에 저항성을 갖게 되어 동일한 혈당 강하 효과를 달성하기 위해 더 많은 인슐린을 필요로 하게 되고 이자는 저항에 맞서서 더 많은 인슐린을 생산하게 된다. 이러한 연쇄 고리는 이자의 피로 및 당뇨병의 발병 진행에 기여한다.
혈당 강하 요법에 대한 신체 반응을 모니터링하기 위해 포도당 수치를 측정할 수 있다.혈당 모니터링은 8시간 금식 후 혈중 포도당의 수준을 측정하는 공복 혈당 검사와 같은 여러 방법에 의해 수행될 수 있다. 또 다른 검사는 2시간 내당능 검사(GTT)이다. 이 검사에서는 공복 혈당 검사를 받은 후 75 g의 포도당 음료를 마시고 다시 검사를 받는다. 이 검사는 사람의 신체가 포도당을 처리하는 능력을 측정한다. 시간이 지남에 따라 인슐린이 세포에 흡수되어 혈류를 빠져나가기 때문에 혈당량은 감소해야 한다.
저혈당증을 초래하는 당뇨병 또는 기타 상태가 있는 사람은 보통 다양한 형태의 소량의 당을 지니고 있다. 일반적으로 사용되는 당은 보통 포도당 정제(때때로 한 가지 이상의 다른 성분을 바인더로 사용하여 정제 모양으로 압축한 포도당),하드 캔디 또는설탕 패킷 형태의 포도당이다.
대부분의 식이 탄수화물은 포도당이 유일한 구성 성분(녹말, 글리코젠과 같은 다당류)이거나 다른 단당류를 포함(설탕, 젖당과 같은 이당류)이다.[131] 결합되지 않은 포도당은꿀의 주요 구성 성분 중 하나이다. 포도당은 매우 풍부하게 존재하며 로마의 침염수 울레미아 노빌리스(Wollemia nobilis)의 숫나무의 콘,[132] 중국의 일렉스 아스프렐라(Ilex asprella) 식물의 뿌리,[133] 캘리포니아의 벼에서 나온 짚[134]을 포함하여 전 세계의 다양한 천연 공급원에서 분리되었다.
포도당은포도당 아밀레이스를 사용하는효소적가수분해 또는산을 사용하여 녹말로부터 산업적으로 생산된다. 효소적 가수분해는 주로 산 촉매 가수분해 반응을 대체했다.[136] 그 결과 포도당 시럽(효소적으로 건조 물질에 포도당이 90% 이상 포함됨)이 탄생했으며[136] 전 세계 연간 생산량은 2천만 톤(2011년 기준)이다.[137] 이것이 포도당의 이전의 통칭인 "녹말당(starch sugar)"인 이유이다. 아밀레이스는 대부분바실루스 리케니포르미스(Bacillus licheniformis)[138] 또는 고초균(Bacillus subtilis) (MN-385 균주)[138]에서 유래하며 원래 사용된 효소보다 열에 더 안정적이다.[138][139] 1982년부터아스페르길루스 니게르(Aspergillus niger)의풀루라네이스가 포도당 시럽 생산에 사용되어아밀로펙틴을아밀로스로 전환하여 포도당 생산 수율을 높였다.[140] 반응은 pH 4.6~5.2 및 55~60 °C의 온도에서 수행된다.[12]옥수수 시럽은 건조 물질에서 20~95%의 포도당을 함유하고 있다.[141][142] 포도당 시럽의 한국식 형태인물엿은고구마 녹말 또는쌀 녹말로 만든다.[143]말토덱스트린은 약 20%의 포도당을 함유하고 있다.
미국에서는 거의 전적으로 옥수수(더 정확하게는 옥수수 시럽)가 포도당과 과당의 혼합물인아이소글루코스 생산을 위한 포도당 공급원으로 사용된다. 과당은 100 g당 374 kcal의 동일한 생리학적 열량을 갖고 있으며 더 높은 감미력을 지니고 있다. 아이소글루코스의 연간 전 세계 생산량은 800만톤(2011년 기준)이다.[137] 옥수수 시럽으로 만들 때 최종 산물은고과당 옥수수 시럽(HFCS)이다.
포도당은 주로 과당 및 포도당 함유 식품의 생산에 사용된다. 식품에서는 감미료,습윤제로 사용되며부피를 증가시키고 더 부드러운식감을 만든다.[136] 포도 주스(포도주용) 또는 맥아(맥주용)와 같은 다양한 포도당 공급원은알코올 음료 생산을 위한 에탄올 발효에 사용된다. 미국에서 대부분의 청량 음료는 HFCS-55(건조 중량에서 과당 함량이 55%)를 사용하는 반면 미국에서 대부분의 다른고과당 옥수수 시럽(HFCS) 가당 식품은 HFCS-42(건조 중량에서 과당 함량이 42%)를 사용한다.[146] 반면에 맥시코에서는 청량 음료에 사탕수수 당을 넣어 단맛을 내는데, 이것은 감미력이 더 높다.[147] 또한 포도당 시럽은 특히사탕,토피,퐁당과 같은과자 생산에 사용된다.[148] 물이 없는 조건에서 포도당의 전형적인 화학 반응은캐러맬화이며, 아미노산이 있는 경우마이야르 반응이다.
또한 예를 들어,무렐라 테르모아세티카(Moorella thermoacetica)로 발효하여아세트산을 생성하고,페니실리움 크리소게눔(Penicillium chrysogenum)으로 발효하여 아라보아스코르브산을 생성하고 리조푸스 델레마르(Rhizopus delemar)로 발효하여푸마르산을 생성하고,아스페르길루스 니게르(Aspergillus niger)로 발효하여글루콘산을 생성하고, 칸디다 브룸프티이(Candida brumptii)로 발효하여아이소시트르산을 생성하고,아스페르길루스 테레우스(Aspergillus terreus)로 발효하여이타콘산을 생성하고,슈도모나스 플루오레스센스(Pseudomonas fluorescens)로 발효하여 2-케토글루콘산을 생성하고, 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans)로 발효하여 5-케토글루콘산을 생성하고,누룩곰팡이(Aspergillus oryzae)로 발효하여코지산을 생성하고,락토바실루스 델브루엑키이(Lactobacillus delbrueckii)로 발효하여젖산을 생성하고,레비락토바실루스 브레비스(Levilactobacillus brevis)로 발효하여말산을 생성하고,프로피오니박테리움 프레우덴레이치이(Propionibacterium freudenreichii)로 발효하여프로피온산을 생성하고,녹농균(Pseudomonas aeruginosa)로 발효하여 피루브산을 생성하고, 글루코노박터 서브옥시단스(Gluconobacter suboxydans)로 발효하여타르타르산을 생성하는 것과 같이 다양한 유기산을 포도당으로부터 생명공학적으로 생성할 수 있다.[149] 일반 전사인자 TFIIH의 XPB 소단위체의 억제를 통해 포유동물의 전사를 억제하는 트립톨라이드와 같은 강력한 생체활성 천연 생성물이 최근 포도당 수송체 발현이 증가된 저산소증 암세포를 표적으로 하는 포도당 접합체로 보고되었다.[150] 최근에 포도당은 다양한 암과 감염을 퇴치하기 위해 저혈당증과 고젖산혈증을 유도하기 위한 젖산과 인슐린을 포함하는 "키트"의 핵심적인 구성 성분으로 상업적으로 사용되고 있다.[151]
펠링 시험은알도스를 검출하기 위한 고전적인 방법이다.[152]변광회전으로 인해 포도당은 항상 열린 사슬 알데하이드로 소량 존재한다. 펠링 시약(펠링 (I) 용액 및 펠링 (II) 용액)을 첨가하면 알데하이드 부분이카복실산으로 산화되는 반면 Cu2+ 주석산염 복합체는 Cu+로 환원되어 적갈색 침전물(Cu2O)을 생성한다.
묽은수산화 칼륨 용액과 포도당을 100 °C로 가열하면 강한 적갈변과캐러멜 같은 냄새가 난다.[156] 농축황산은 상온에서 흑화되지 않고 건조 포도당을 용해하여 당 황산을 생성한다.[156] 효모 용액에서 알코올 발효는 2.0454 분자의 포도당과 1분자의이산화 탄소의 비율로 이산화 탄소를 생성한다.[156] 포도당은염화 주석(II)과 함께 검은 덩어리를 형성한다.[156] 암모니아성 은 용액에서 포도당(젖당 및 덱스트린 포함)은 은의 침착을 유도한다. 암모니아성아세트산 납 용액에서 흰색 납 글리코사이드는 포도당이 있는 상태에서 형성되며 요리시 덜 용해되고 갈색으로 변한다.[156] 암모니아성 구리 용액에서 실온에서 포도당과 함께 황색산화 구리 수화물이 형성되는 반면, 끓는 동안 적색 산화 구리가 형성(암모니아성 아세트산 구리 용액을 제외하고 덱스트린과 동일)된다.[156]하거 시약을 사용하면 포도당이 끓는 동안산화 수은이 형성된다.[156] 알칼리성비스무트 용액은 포도당과 함께 흑갈색 비스무트를 침전시키는 데 사용된다.[156]몰리브데넘산 암모늄 용액에 끓인 포도당을 첨가하면 용액을 파란색으로 변화시킨다.인디고 카민과탄산 나트륨이 포함된 용액은 포도당과 함께 끓일 때 탈색된다.[156]
테스트 스트립 방법은 위에서 언급한 과산화 수소를 형성하기 위해 포도당을 글루콘산으로 전환시키는 효소를 사용한다. 시약은 다소 강렬한 색상을 나타내는 소위 테스트 스트립이라고 하는 폴리머 매트릭스에 고정된다. 이는 LED 기반 휴대용 광도계를 사용하여 510 nm에서 반사율로 측정할 수 있다. 이를 통해 비과학자도 일상적인 혈당 측정이 가능하게 되었다. 페놀과 4-아미노안티피린의 반응 외에도 더 높은 파장(550 nm, 750 nm)에서 광측정을 할 수 있게 하는 새로운 발색 반응이 개발되었다.[157][159]
포도당의 전기 분석도 위에서 언급한 효소 반응을 기반으로 한다. 생성된 과산화 수소는 600 mV에서 양극 산화에 의해 전류 측정법으로 정량화할 수 있다.[160] 포도당 산화효소(GOx)는 전극의 표면 또는 전극에 가까운 막에 고정된다. 백금이나 금과 같은 귀금속은 탄소 나노튜브 전극(예: 붕소도 도핑된) 뿐만 아니라 전극에도 사용된다.[161] Cu–CuO 나노와이어는 효소가 없는 전류 측정 전극으로도 사용되며 검출 한계는 50 μmol/L이다.[162] 특히 유망한 방법은 산화 중에 흐르는 전자가 분자 와이어를 통해 효소에서 전극으로 직접적으로 전달되는 소위 "효소 배선(enzyme wiring)"이다.[163]
포도당을 측정하기 위한 다양한 화학 센서들이 있다.[164][165]생명과학에서 포도당 분석의 중요성을 감안할 때 붕산의 사용을 기반으로 한 당류에 대한 수많은 광학 탐침도 개발되었으며,[166] 이는 다른 광학적 방법이 사용될 수 없거나 조건부로만 사용할 수 있는 세포 내 감작 활용 분야에 특히 유용하다. 보통 당의 1,2-다이올 그룹에 매우 특이적으로 결합하는 유기 붕산 유도체 외에도 선택적 포도당 결합 단백질(예: 콘카나발린 A)을 수용체로 사용하는 기능적 메커니즘으로 분류되는 다른 탐침 개념도 있다. 또한 대산 산물의 농도를 통해 포도당이 농도를 간접적으로 감지하는 방법(예: 형광 광학 센서를 사용하여 산소를 소비함으로써)이 개발되었다.[167] 마지막으로 형광 표지된 효소의 고유 흡광도 또는 형광을 리포터로 사용하는 효소 기반 개념이 있다.[164]
특히 포도당을 포함하는 복잡한 혼합물의 분석을 위해 예를 들면 꿀에서는고성능 액체 크로마토그래피 및기체 크로마토그래피와 같은 크로마토그래피법이[168]질량 분석법과 함께 사용된다.[169][170] 동위 원소 비율을 고려하면 이러한 방법으로 첨가된 당에 의한 꿀의 불순물을 안정적으로 감지할 수도 있다.[171] 실릴화 시약을 사용한 유도체화가 일반적으로 사용된다.[172] 또한 이당류와 삼당류의 비율을 정량화할 수 있다.
12Boerio-Goates, Juliana (1991),“Heat-capacity measurements and thermodynamic functions of crystalline α-D-glucose at temperatures from 10K to 340K”,《J. Chem. Thermodyn.》23 (5): 403–09,doi:10.1016/S0021-9614(05)80128-4
↑Ponomarev, V. V.; Migarskaya, L. B. (1960),“Heats of combustion of some amino-acids”,《Russ. J. Phys. Chem. (Engl. Transl.)》34: 1182–83
12“L-glucose” (미국 영어).《Biology Articles, Tutorials & Dictionary Online》. 2019년 10월 7일. 2022년 5월 25일에원본 문서에서 보존된 문서. 2022년 5월 6일에 확인함.
↑“L-glucose” (미국 영어).《Biology Articles, Tutorials & Dictionary Online》. 2019년 10월 7일. 2022년 5월 6일에 확인함.
12World Health Organization (2019).《World Health Organization model list of essential medicines: 21st list 2019》. Geneva: World Health Organization.hdl:10665/325771. WHO/MVP/EMP/IAU/2019.06. License: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.
↑Thénard, Gay-Lussac, Biot, and Dumas (1838)"Rapport sur un mémoire de M. Péligiot, intitulé: Recherches sur la nature et les propriétés chimiques des sucres".보관됨 2015-12-06 -웨이백 머신 (Report on a memoir of Mr. Péligiot, titled: Investigations on the nature and chemical properties of sugars),Comptes rendus,7: 106–113.From page 109.보관됨 2015-12-06 -웨이백 머신: "Il résulte des comparaisons faites par M. Péligot, que le sucre de raisin, celui d'amidon, celui de diabètes et celui de miel ont parfaitement la même composition et les mêmes propriétés, et constituent un seul corps que nous proposons d'appelerGlucose (1). ... (1) γλευχος, moût, vin doux." It follows from the comparisons made by Mr. Péligot, that the sugar from grapes, that from starch, that from diabetes and that from honey have exactly the same composition and the same properties, and constitute a single substance that we propose to callglucose (1) ... (1) γλευχος, must, sweet wine.
↑Marggraf (1747)"Experiences chimiques faites dans le dessein de tirer un veritable sucre de diverses plantes, qui croissent dans nos contrées"보관됨 2016-06-24 -웨이백 머신 [Chemical experiments made with the intention of extracting real sugar from diverse plants that grow in our lands],Histoire de l'académie royale des sciences et belles-lettres de Berlin, pp. 79–90.From page 90:보관됨 2014-10-27 -웨이백 머신"Les raisins secs, etant humectés d'une petite quantité d'eau, de maniere qu'ils mollissent, peuvent alors etre pilés, & le suc qu'on en exprime, etant depuré & épaissi, fournira une espece de Sucre." (Raisins, being moistened with a small quantity of water, in a way that they soften, can be then pressed, and the juice that is squeezed out, [after] being purified and thickened, will provide a sort of sugar.)
↑John F. Robyt:Essentials of Carbohydrate Chemistry. Springer Science & Business Media, 2012,ISBN978-1-461-21622-3. p. 7.
↑Wenyue Kang and Zhijun Zhang (2020): "Selective Production of Acetic Acid via Catalytic Fast Pyrolysis of Hexoses over Potassium Salts",Catalysts, volume 10, pages 502–515.doi:10.3390/catal10050502
↑Aga MB, Sharma V, Dar AH, Dash KK, Singh A, Shams R, Khan SA (2023).“Comprehensive review on functional and nutraceutical properties of honey”.《Efood》4 (2).doi:10.1002/efd2.71.
↑Takagi, S.; Jeffrey, G. A. (1979).“1,2-O-isopropylidene-D-glucofuranose”.《Acta Crystallographica Section B》B35 (6): 1522–1525.doi:10.1107/S0567740879006968.
↑Bielecki, Mia; Eggert, Hanne; Christian Norrild, Jens (1999).“A fluorescent glucose sensor binding covalently to all five hydroxy groups of α-D-glucofuranose. A reinvestigation”.《Journal of the Chemical Society, Perkin Transactions》2 (3): 449–456.doi:10.1039/A808896I.
↑Juaristi, Eusebio; Cuevas, Gabriel (1995),《The Anomeric Effect》, CRC Press, 9–10쪽,ISBN978-0-8493-8941-2
12Manfred Hesse, Herbert Meier, Bernd Zeeh, Stefan Bienz, Laurent Bigler, Thomas Fox:Spektroskopische Methoden in der organischen Chemie. 8th revised Edition. Georg Thieme, 2011,ISBN978-3-13-160038-7, p. 34 (in German).
↑Varki, A.; Cummings, R. D.; Esko, J. D.; Freeze, H. H.; Stanley, P.; Bertozzi, C. R.; Hart, G. W.; Etzler, M. E. (2009). Varki, Ajit (편집).《Essentials of Glycobiology》 2판. Cold Spring Harbor Laboratories Press.ISBN978-0-87969-770-9.PMID20301239. 2016년 12월 6일에원본 문서에서 보존된 문서.
↑Wu, Xiaohua; Freeze, Hudson H. (December 2002).“GLUT14, a Duplicon of GLUT3, is Specifically Expressed in Testis as Alternative Splice Forms”.《Genomics》80 (6): 553–7.doi:10.1006/geno.2002.7010.PMID12504846.
↑H. Robert Horton, Laurence A. Moran, K. Gray Scrimgeour, Marc D. Perry, J. David Rawn:Biochemie. Pearson Studium; 4. aktualisierte Auflage 2008;ISBN978-3-8273-7312-0; p. 490–496. (german)
12Brian K. Hall:Strickberger's Evolution. Jones & Bartlett Publishers, 2013,ISBN978-1-449-61484-3, p.164.
↑Szablewski, L. (2013).“Expression of glucose transporters in cancers”.《Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Reviews on Cancer》1835 (2): 164–9.doi:10.1016/j.bbcan.2012.12.004.PMID23266512.
↑Masicampo, E. J.; Baumeister, Roy F. (2008),“Toward a Physiology of Dual-Process Reasoning and Judgment: Lemonade, Willpower, and Expensive Rule-Based Analysis”,《Psychol. Sci.》19 (3): 255–60,doi:10.1111/j.1467-9280.2008.02077.x,PMID18315798,S2CID38596025
123Donard Dwyer:Glucose Metabolism in the Brain. Academic Press, 2002,ISBN978-0-123-66852-3, p.XIII.
↑Bisschop, P. H.; Fliers, E.; Kalsbeek, A. (2015).“Autonomic regulation of hepatic glucose production”.《Comprehensive Physiology》5 (1): 147–165.doi:10.1002/cphy.c140009.PMID25589267.
↑W. A. Scherbaum, B. M. Lobnig, In: Hans-Peter Wolff, Thomas R. Weihrauch:Internistische Therapie 2006, 2007. 16th Edition. Elsevier, 2006,ISBN3-437-23182-0, p.927, 985(독일어).
↑Harold A. Harper:Medizinische Biochemie. Springer-Verlag, 2013,ISBN978-3-662-22150-1, p.294.
↑Estela, Carlos (2011) "Blood Glucose Levels," Undergraduate Journal of Mathematical Modeling: One + Two: Vol. 3: Iss. 2, Article 12.
↑“Carbohydrates and Blood Sugar” (미국 영어).《The Nutrition Source》. 2013년 8월 5일. 2017년 1월 30일에원본 문서에서 보존된 문서. 2017년 1월 30일에 확인함– Harvard T.H. Chan School of Public Health 경유.
12Thomas Becker, Dietmar Breithaupt, Horst Werner Doelle, Armin Fiechter, Günther Schlegel, Sakayu Shimizu, Hideaki Yamada:Biotechnology, in:Ullmann's Encyclopedia of Industrial Chemistry, 7th Edition, Wiley-VCH, 2011.ISBN978-3-527-32943-4. Volume 6, p. 48.
123The Amylase Research Society of Japan:Handbook of Amylases and Related Enzymes. Elsevier, 2014,ISBN978-1-483-29939-6, p.195.
↑Madsen, G. B.; Norman, B. E.; Slott, S. (1973).“A New, Heat Stable Bacterial Amylase and its Use in High Temperature Liquefaction”.《Starch – Stärke》25 (9): 304–308.doi:10.1002/star.19730250906.
↑Norman, B. E. (1982).“A Novel Debranching Enzyme for Application in the Glucose Syrup Industry”.《Starch – Stärke》34 (10): 340–346.doi:10.1002/star.19820341005.
↑Alan Davidson:Oxford Companion to Food (1999). "Mizuame", p.510ISBN0-19-211579-0.
↑Alan Davidson:The Oxford Companion to Food. OUP Oxford, 2014,ISBN978-0-191-04072-6, p.527.
↑“Sugar”. Learning, Food Resources.《food.oregonstate.edu》. Oregon State University, Corvallis, OR. 2012년 5월 23일. 2011년 7월 18일에원본 문서에서 보존된 문서. 2018년 6월 28일에 확인함.
↑Emil Nylander:Über alkalische Wismuthlösung als Reagens auf Traubenzucker im Harne, Zeitschrift für physiologische Chemie. Volume 8, Issue 3, 1884, p.175–185Abstract.보관됨 2015-09-23 -웨이백 머신 (in German).
↑Trinder, P. (1969).“Determination of Glucose in Blood Using Glucose Oxidase with an Alternative Oxygen Acceptor”.《Annals of Clinical Biochemistry》6: 24–27.doi:10.1177/000456326900600108.S2CID58131350.
↑Ohara, T. J.; Rajagopalan, R.; Heller, A. (1994).“"Wired" enzyme electrodes for amperometric determination of glucose or lactate in the presence of interfering substances”.《Analytical Chemistry》66 (15): 2451–2457.doi:10.1021/ac00087a008.PMID8092486.
↑Mader, Heike S.; Wolfbeis, Otto S. (2008).“Boronic acid based probes for microdetermination of saccharides and glycosylated biomolecules”.《Microchimica Acta》162 (1–2): 1–34.doi:10.1007/s00604-008-0947-8.S2CID96768832.
↑Wolfbeis, Otto S.; Oehme, Ines; Papkovskaya, Natalya; Klimant, Ingo (2000).“Sol–gel based glucose biosensors employing optical oxygen transducers, and a method for compensating for variable oxygen background”.《Biosensors and Bioelectronics》15 (1–2): 69–76.doi:10.1016/S0956-5663(99)00073-1.PMID10826645.
↑Sanz, M. L.; Sanz, J.; Martínez-Castro, I. (2004).“Gas chromatographic-mass spectrometric method for the qualitative and quantitative determination of disaccharides and trisaccharides in honey.”.《Journal of Chromatography A》1059 (1–2): 143–148.doi:10.1016/j.chroma.2004.09.095.PMID15628134.
↑Max Planck Institute of Molecular Plant Physiology in Golm Database (2007년 7월 19일).“Glucose mass spectrum”.《Golm Metabolome Database》. 2018년 9월 9일에원본 문서에서 보존된 문서. 2018년 6월 4일에 확인함.
↑Cabañero, A. I.; Recio, J. L.; Rupérez, M. (2006).“Liquid chromatography coupled to isotope ratio mass spectrometry: a new perspective on honey adulteration detection.”.《J Agric Food Chem》54 (26): 9719–9727.doi:10.1021/jf062067x.PMID17177492.
↑Becker, M.; Liebner, F.; Rosenau, T.; Potthast, A. (2013).“Ethoximation-silylation approach for mono- and disaccharide analysis and characterization of their identification parameters by GC/MS”.《Talanta》115: 642–51.doi:10.1016/j.talanta.2013.05.052.PMID24054643.
.svg)
.jpg)
.jpg)
