Movatterモバイル変換


[0]ホーム

URL:


Zum Inhalt springen
WikipediaDie freie Enzyklopädie
Suche

Glycerinaldehyd-3-phosphat-Dehydrogenase

aus Wikipedia, der freien Enzyklopädie
Glyceraldehyd-3-Phosphat-Dehydrogenase
Glyceraldehyd-3-Phosphat-Dehydrogenase
Oberflächen-/Bändermodell des GAPDH-Tetramer, nachPDB 1U8F
Glyceraldehyd-3-Phosphat-Dehydrogenase

Vorhandene Strukturdaten:1j0x,1u8f,1znq,2feh,3gpd

Eigenschaften des menschlichen Proteins
Masse/LängePrimärstruktur334 aa; 35,9 kDa
Sekundär- bisQuartärstrukturHomotetramer
KofaktorPRKCI, Sulfat
Bezeichner
Gen-NamenGAPDH, GAPD
Externe IDs
Enzymklassifikation
EC, Kategorie1.2.1.12Oxidoreduktase
ReaktionsartPhosphorylierung
SubstratD-Glyceraldehyd-3-phosphat + Phosphat + NAD(+)
Produkte3-Phospho-D-glyceroylphosphat + NADH
Vorkommen
Homologie-FamilieCLU_030140_0_3
ÜbergeordnetesTaxonLebewesen
Orthologe
MenschHuhn
Entrez2597374193
EnsemblENSG00000111640ENSGALG00000014442
UniProtP04406P00356
Refseq (mRNA)NM_002046NM_204305
Refseq (Protein)NP_002037NP_989636
GenlocusChr 12: 6.51 – 6.52 MbChr 1: 80.09 – 80.09 Mb
PubMed-Suche2597374193

DieGlycerinaldehyd-3-phosphat-Dehydrogenase (GAPDH, Syn. 3-Phosphoglycerinaldehyd-Dehydrogenase) ist einEnzym derGlycolyse und daher unentbehrlich für alle Lebewesen. Sie katalysiert die Umwandlung vonGlycerinaldehyd-3-phosphat zu1,3-Bisphosphoglycerat. Bei dieser Reaktion wird eine energiereichePhosphat-Bindung aufgebaut, die im folgenden Schritt der Glycolyse auf ADP übertragen wird, wodurch ATP entsteht. Außerdem wird in der katalysierten Reaktion einNAD+ zu NADH/H+ umgewandelt.

Struktur

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

Unter normalen zellulären Bedingungen existiert dascytoplasmatische GAPDH hauptsächlich alsTetramer. Diese Form besteht aus vier identischen 37-kDa-Untereinheiten, die jeweils eine einzige katalytischeThiolgruppe enthalten und für die katalytische Funktion des Enzyms entscheidend sind.[1][2] Die GAPDH imZellkern hat einen erhöhtenisoelektrischen Punkt (pI) bei pH 8,3 bis 8,7.[2] Der Cysteinrest Cys152 imaktiven Zentrum des Enzyms ist für die Induktion derApoptose durchoxidativen Stress erforderlich.[2] Insbesondere tragenposttranslationale Modifikationen der cytoplasmatischen GAPDH zu seinen Funktionen außerhalb der Glykolyse bei.[1]

Katalytischer Mechanismus

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

Zum Verständnis des Reaktionsmechanismus der GAPDH haben folgendeenzymologische Experimente beigetragen:[3]

  • GAPDH wurde durchAlkylierung mit stöchiometrischen Mengen anIodacetat unwirksam gemacht. Das Vorhandensein vonCarboxymethylcystein imHydrolysat des resultierenden alkylierten Enzyms zeigt, dass GAPDH im aktiven Zentrum einen Cysteinrest besitzt, dessen Thiolgruppe im Mechanismus eine Rolle spielt.
Alkylierung von GAPDH
  • GAPDH überträgt quantitativ einTritium vom C1-Atom von GAP zu NAD+. Damit konnte man beweisen, dass die Reaktion über eine Hydridübertragung verläuft.
Quantitativer Tritiumtransfer vom Substrat zu NAD(+)
  • GAPDH katalysiert den Austausch von32P zwischen Pi undAcetylphosphat.[4] Solche Isotopenaustauschreaktionen weisen auf einen Acyl-Enzym alsZwischenprodukt hin, d. h., dass dieAcylgruppe einen kovalenten Komplex mit dem Enzym bildet, ähnlich wie das Acyl-Enzym-Intermediat im Reaktionsmechanismus vonSerinproteasen.
Isotopenaustauschreaktion mit GAPDH

Das Hauptproblem der Reaktion stellt die Abspaltung des H-Ion (Hydridion) von derAldehydgruppe des Glycerinaldehyd-3-Phosphats dar. Dies ist energetisch ungünstig, da der Kohlenstoff in der Aldehydgruppe eine positive Partialladung trägt. Durch eine Sulfhydrylgruppe einesCysteins des Enzyms wird über einekovalente Bindung einnukleophiler Rest eingeführt. Das Nukleophil greift den Carbonylkohlenstoff von Glycerinaldehyd-3-phosphat (GAP) an, um ein Thiohalbacetal zu bilden. Nach Abstraktion des Protons der Hydroxygruppe am C1-Atom von GAP durch eine Base löst sich das Hydridion und zwischen Enzym und Substrat entsteht einThioester (Oxidation). Diese energiereiche Verbindung wird in der nachfolgenden Reaktion benutzt, um ein anorganischesPhosphat zu binden und das Zwischenprodukt in 1,3-Bisphosphoglycerat umzuwandeln (Phosphorylierung). Das Hydridion bindet mittlerweile an ein nicht-kovalent an einerRossmann-Faltung gebundenes NAD+,[5] so dass NADH/H+entsteht. Dieses löst sich aus der Bindung mit dem Enzym und wird durch ein NAD+ ersetzt,[6] weil die positive Ladung des NAD+ das Thioester-Zwischenprodukt polarisiert, um den Angriff durch das Orthophosphat zu erleichtern.[7]Die katalysierte Reaktion nimmt energetisch einen hohen Stellenwert ein. Das entstandene gemischte Anhydrid aus Phosphor- undCarbonsäure wird in der nachfolgenden Reaktion zurATP-Bildung verwendet. Aus dem NADH/H+ kann wiederum ATP in derAtmungskette gebildet werden.[8] Weil Zellen nur eine begrenzte Menge an NAD+ besitzen, würde die Glykolyse stehenbleiben, wenn das in der Glykolyse produzierte NADH nicht kontinuierlich reoxidiert werden würde. Daher wird NAD+ aus demanaeroben Abbau von Pyruvat regeneriert.[5][9]

Reaktionsmechanismus der Glycerinaldehyd-3-phosphat-Dehydrogenase vonE. coli.[7]
Aktives Zentrum der Glycerinaldehyd-3-phosphat-Dehydrogenase vonE. coli,[10][11] nachPDB 1GAD.

Die von der Glycerinaldehyd-3-phosphat-Dehydrogenase katalysierte Reaktion ist in Wirklichkeit die Summe zweier Prozesse: der Oxidation von Glycerinaldehyd-3-phosphat zu 3-Phosphoglycerat durch NAD+ und der Phosphorylierung von 3-Phosphoglycerat zu 1,3-Bisphosphoglycerat (Dehydratisierung).

Oxidation von Glycerinaldehyd-3-phosphat zu 3-Phosphoglycerat (obere Reaktion) und Bildung von 1,3-Bisphosphoglycerat aus 3-Phosphoglycerat und Orthophosphat (untere Reaktion)

Die erste Reaktion ist mit einer Änderung derfreien Standardenthalpie (ΔG{\displaystyle \Delta G^{\circ \prime }}) von etwa −50 kJ/mol thermodynamisch recht günstig. Die zweite Reaktion verläuft mit einer freien Standardenthalpie von ungefähr +50 kJ/mol sehr ungünstig. Daher müssen die beiden Reaktionen miteinander gekoppelt verlaufen, damit die Aldehydoxidation die Bildung des Acylphosphats antreiben kann. Die Kopplung erfolgt durch ein Thioester-Zwischenprodukt, welches durch eine Thioesterbindung an das Enzym gebunden ist. Thioester sind energiereiche Verbindungen, die man in vielen biochemischen Stoffwechselwegen findet. Diefreie Energie des Thioester-Zwischenproduktes ist größer als die der freien Carbonsäure. Damit bleibt der größte Teil der freien Enthalpie, die bei der Oxidationsreaktion frei wurde, erhalten.[12]

Eigenschaften und Funktion

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

Alle Schritte der Glykolyse finden im Cytosol statt, ebenso die durch GAPDH katalysierte Reaktion. Inroten Blutkörperchen bilden GAPDH und mehrere andere glykolytische Enzyme bestimmteEnzymkomplexe auf der Innenseite derZellmembran. Der Prozess scheint durch Phosphorylierung und Oxygenierung reguliert zu werden.[13] Es wird erwartet, dass die Annäherung mehrerer glykolytischer Enzyme die Gesamtgeschwindigkeit des Glukoseabbaus stark erhöht. Einige Studien haben auch gezeigt, dass GAPDH auf der Außenseite der ZellmembranEisen-abhängigexprimiert wird und dort eine Rolle bei der Aufrechterhaltung der zellulären Eisenhomöostase spielt,[14][15] insbesondere alsChaperonprotein für labilesHäm in Zellen.[16]

Transkription und Apoptose

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

GAPDH kann selbst dieTranskription aktivieren. DerOCA-S-Transkriptionscoaktivator-Komplex enthält GAPDH undLactatdehydrogenase, zwei Proteine, von denen bisher angenommen wurde, dass sie nur am Stoffwechsel beteiligt sind. GAPDH bewegt sich zwischen dem Cytosol und dem Zellkern und kann so den metabolischen Zustand mit der Gentranskription verbinden.[17]

Im Jahr 2005 haben Haraet al. gezeigt, dass GAPDH die Apoptose initiiert. Die Initiation wird durch die GAPDH-Bindung anDNA vermittelt. Die Studie zeigte, dass GAPDH durchStickstoffmonoxid als Reaktion auf ZellstressS-nitrosyliert wird, wodurch es an das Protein SIAH1, eineUbiquitin-Ligase, bindet. Der Komplex bewegt sich in den Zellkern, in dem SIAH1 auf Kernproteine zum Abbau abzielt, wodurch ein kontrolliertes Herunterfahren der Zellen eingeleitet wird.[18] In einer anschließenden Studie zeigte die Gruppe, dassSelegilin, das klinisch zur Behandlung derParkinson-Krankheit eingesetzt wurde, die apoptotische Wirkung von GAPDH stark reduziert, indem es dessenS-Nitrosylierung verhindert und daher möglicherweise als Medikament eingesetzt werden kann.[19]

Stoffwechselschalter

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

GAPDH wirkt unter oxidativem Stress als reversibler Stoffwechselschalter.[20] Wenn Zellen bestimmtenOxidationsmitteln ausgesetzt sind, benötigen sie übermäßige Mengen des antioxidativen CofaktorsNADPH. Im Cytosol wird NADPH durch mehrere Enzyme aus der Reduktion von NADP+ hergestellt, von denen drei die ersten Schritte desPentosephosphatwegs katalysieren. Oxidationsmittel-Behandlungen verursachen eine Inaktivierung von GAPDH. Durch diese Inaktivierung wird der Stoffwechselfluss von der Glykolyse auf den Pentosephosphatweg umgeleitet, sodass die Zelle mehr NADPH erzeugen kann.[21] Unter Stressbedingungen wird NADPH von einigen Antioxidanssystemen, einschließlichGlutaredoxin undThioredoxin, benötigt und ist für das Recycling vonGlutathion essentiell.

Hemmung

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

Die Bildung des energiereichen Anhydrids ist durchArsen hemmbar. AsO43− bindet dabei analog zumPhosphat an die GAPDH. NADH wird weiterhin gebildet.[22] Die Bindung zwischen dem Carboxylat, das aus der Oxidation des Aldehyds entsteht und dem Arsenat ist jedoch sehr instabil, so dass das gemischte Anhydrid zu3-Phosphoglycerat zerfällt. Dadurch wird ein energiefixierender Schritt in der Glykolyse übersprungen, was zur Giftwirkung des Arsens beiträgt.[23]

Weitere Funktionen

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

GAPDH scheint auch am Vesikeltransport vomendoplasmatischen Retikulum (ER) zumGolgi-Apparat beteiligt zu sein, der Teil der Transportroute für sezernierte Proteine ist. Es wurde festgestellt, dass GAPDH vonRab2 in die vesikulär-tubulären Cluster des ER rekrutiert wird, wo es zur Bildung vonCOPI-Vesikeln beiträgt. GAPDH wird durch Tyrosinphosphorylierung durchTyrosinkinase Src aktiviert.[24]

Da das GAPDH-Gen in den meisten Geweben und Zellen in hohem Maße stabil und konstitutiv exprimiert wird, wird es alsHaushaltsgen angesehen. Aus diesem Grund wird GAPDH von biologischen Forschern häufig als Ladungskontrolle fürWestern Blot und als Kontrolle für dieqPCR verwendet. Forscher berichteten jedoch über unterschiedliche GAPDH-Regulationen unter bestimmten Bedingungen.[25] Beispielsweise wurde gezeigt, dass derTranskriptionsfaktorMZF-1 das GAPDH-Gen reguliert.[26] Daher muss die Verwendung von GAPDH als Ladungskontrolle sorgfältig abgewogen werden.

Klinische Bedeutung

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

Krebs

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

GAPDH wird bei mehreren Krebsarten beim Menschen, wie demHautmelanom,überexprimiert und seine Expression korreliert positiv mit dem Fortschreiten des Tumors.[27][28] Seine glykolytischen und anti-apoptotischen Funktionen tragen zurProliferation und zum Schutz von Tumorzellen bei und fördern dieKarzinogenese. Insbesondere schützt GAPDH vorTelomerverkürzung, die durch chemotherapeutische Medikamente induziert wird, die dasSphingolipidCeramid stimulieren. Ebenso beeinträchtigen Bedingungen wie oxidativer Stress die GAPDH-Funktion und führen zu Zellalterung und Tod.[2] Darüber hinaus wird durch die Entfernung von GAPDH eineSeneszenz in Tumorzellen induziert, was eine neuartige Therapiestrategie zur Kontrolle des Tumorwachstums darstellt.[29]

Neurodegenerative Erkrankung

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]

GAPDH ist an mehreren neurodegenerativen Krankheiten und Störungen beteiligt, hauptsächlich durch Wechselwirkungen mit anderen Proteinen, die für diese Krankheit oder Störung spezifisch sind. Diese Wechselwirkungen können nicht nur den Energiestoffwechsel, sondern auch andere GAPDH-Funktionen beeinflussen.[1] Beispielsweise könnten GAPDH-Wechselwirkungen mit dem β-Amyloid-Precursor-Protein (BetaAPP) die Funktion desCytoskeletts oder desMembrantransports beeinträchtigen, während Wechselwirkungen mitHuntingtin die Funktion der Apoptose, des nukleärentRNA-Transports, derDNA-Replikation und derDNA-Reparatur beeinträchtigen könnten. Darüber hinaus wurde über die nukleäre Translokation (Transport durch die Kernporen des Zellkerns) von GAPDH bei der Parkinson-Krankheit (PD) berichtet und mehrere anti-apoptotische PD-Medikamente wieRasagilin wirken, indem sie die nukleäre Translokation von GAPDH verhindern. Es wird vermutet, dass der Hypometabolismus (erniedrigte Stoffwechselrate) einen Beitrag zur Parkinson-Krankheit leistet. Die genauen Mechanismen, die der Beteiligung von GAPDH an neurodegenerativen Erkrankungen zugrunde liegen, müssen jedoch noch geklärt werden.[30] DerSNP rs3741916 im5′-UTR des GAPDH-Gens kann mit derlate-onsetAlzheimer-Krankheit assoziiert sein.[31]

Gene, Proteine und Metaboliten sind zu den jeweiligen Artikeln in Wikipedia, WikiPathways oderEntrez Gene verlinkt.

Weblinks

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]
Wikibooks: Glycerinaldehyd-3-phosphat-Dehydrogenase – Lern- und Lehrmaterialien
Wikibooks: Glycolyse – Lern- und Lehrmaterialien

Einzelnachweise

[Bearbeiten |Quelltext bearbeiten]
  1. abcC. Tristan, N. Shahani, T. W. Sedlak, A. Sawa:The diverse functions of GAPDH: views from different subcellular compartments. In:Cellular signalling. Band 23, Nummer 2, Februar 2011, S. 317–323,doi:10.1016/j.cellsig.2010.08.003,PMID 20727968,PMC 3084531 (freier Volltext) (Review).
  2. abcdC. Nicholls, H. Li, J. P. Liu:GAPDH: a common enzyme with uncommon functions. In:Clinical and experimental pharmacology & physiology. Band 39, Nummer 8, August 2012, S. 674–679,doi:10.1111/j.1440-1681.2011.05599.x,PMID 21895736 (Review).
  3. Donald Voet, Judith G. Voet, Charlotte W. Pratt:Fundamentals of Biochemistry. Life at the Molecular Level. 5. Auflage.John Wiley & Sons, Hoboken, NJ 2016,ISBN 978-1-118-91840-1,S. 489 (eingeschränkte Vorschau in der Google-Buchsuche). 
  4. Acetylphosphat, Lexikon der Biologie;Acetylphosphat, Lexikon der Chemie. Aufspektrum.de.
  5. abDavid L. Nelson, Albert L. Lehninger, Michael M. Cox:Lehninger Principles of Biochemistry. 5. Auflage. W. H. Freeman, 2008,ISBN 978-1-4292-0892-5,S. 530. 
  6. Stryer, Lubert:Biochemie. 4. Auflage. Spektrum der Wissenschaft Verlag, Heidelberg 1996, S. 526.
  7. abJeremy M. Berg, John L. Tymoczko, Lubert Stryer, Gregory J. Gatto jr.:Stryer Biochemie. Springer-Verlag, 2014,ISBN 978-3-8274-2988-9,S. 465–466 (eingeschränkte Vorschau in der Google-Buchsuche). 
  8. Florian Horn et al.:Biochemie des Menschen, Stuttgart 2003,ISBN 3-13-130883-4, S. 80.
  9. Jeremy M. Berg, John L. Tymoczko, Lubert Stryer, Gregory J. Gatto jr.:Stryer Biochemie. Springer-Verlag, 2014,ISBN 978-3-8274-2988-9,S. 470 (eingeschränkte Vorschau in der Google-Buchsuche). 
  10. Jeremy M. Berg, John L. Tymoczko, Lubert Stryer, Gregory J. Gatto jr.:Stryer Biochemie. Springer-Verlag, 2014,ISBN 978-3-8274-2988-9,S. 465 (eingeschränkte Vorschau in der Google-Buchsuche). 
  11. E. Duée, L. Olivier-Deyris, E. Fanchon, C. Corbier, G. Branlant, O. Dideberg:Comparison of the structures of wild-type and a N313T mutant of Escherichia coli glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenases: implication for NAD binding and cooperativity. In:Journal of molecular biology. Band 257, Nummer 4, April 1996, S. 814–838,doi:10.1006/jmbi.1996.0204,PMID 8636984.
  12. Jeremy M. Berg, John L. Tymoczko, Lubert Stryer, Gregory J. Gatto jr.:Stryer Biochemie. Springer-Verlag, 2014,ISBN 978-3-8274-2988-9,S. 464–465 (eingeschränkte Vorschau in der Google-Buchsuche). 
  13. M. E. Campanella, H. Chu, P. S. Low:Assembly and regulation of a glycolytic enzyme complex on the human erythrocyte membrane. In:Proceedings of the National Academy of Sciences. Band 102, Nummer 7, Februar 2005, S. 2402–2407,doi:10.1073/pnas.0409741102,PMID 15701694,PMC 549020 (freier Volltext).
  14. M. A. Sirover:Structural analysis of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase functional diversity. In:The international journal of biochemistry & cell biology. Band 57, Dezember 2014, S. 20–26,doi:10.1016/j.biocel.2014.09.026,PMID 25286305,PMC 4268148 (freier Volltext) (Review).
  15. S. Kumar, N. Sheokand, M. A. Mhadeshwar, C. I. Raje, M. Raje:Characterization of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase as a novel transferrin receptor. In:The international journal of biochemistry & cell biology. Band 44, Nummer 1, Januar 2012, S. 189–199,doi:10.1016/j.biocel.2011.10.016,PMID 22062951.
  16. E. A. Sweeny, A. B. Singh, R. Chakravarti, O. Martinez-Guzman, A. Saini, M. M. Haque, G. Garee, P. D. Dans, L. Hannibal, A. R. Reddi, D. J. Stuehr:Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase is a chaperone that allocates labile heme in cells. In:Journal of Biological Chemistry. Band 293, Nummer 37, 09 2018, S. 14557–14568,doi:10.1074/jbc.RA118.004169,PMID 30012884,PMC 6139559 (freier Volltext).
  17. L. Zheng, R. G. Roeder, Y. Luo:S phase activation of the histone H2B promoter by OCA-S, a coactivator complex that contains GAPDH as a key component. In:Cell. Band 114, Nummer 2, Juli 2003, S. 255–266,doi:10.1016/s0092-8674(03)00552-x,PMID 12887926.
  18. M. R. Hara, N. Agrawal, S. F. Kim, M. B. Cascio, M. Fujimuro, Y. Ozeki, M. Takahashi, J. H. Cheah, S. K. Tankou, L. D. Hester, C. D. Ferris, S. D. Hayward, S. H. Snyder, A. Sawa:S-nitrosylated GAPDH initiates apoptotic cell death by nuclear translocation following Siah1 binding. In:Nature cell biology. Band 7, Nummer 7, Juli 2005, S. 665–674,doi:10.1038/ncb1268,PMID 15951807.
  19. M. R. Hara, B. Thomas, M. B. Cascio, B. I. Bae, L. D. Hester, V. L. Dawson, T. M. Dawson, A. Sawa, S. H. Snyder:Neuroprotection by pharmacologic blockade of the GAPDH death cascade. In:Proceedings of the National Academy of Sciences. Band 103, Nummer 10, März 2006, S. 3887–3889,doi:10.1073/pnas.0511321103,PMID 16505364,PMC 1450161 (freier Volltext).
  20. A. R. Agarwal, L. Zhao, H. Sancheti, I. K. Sundar, I. Rahman, E. Cadenas:Short-term cigarette smoke exposure induces reversible changes in energy metabolism and cellular redox status independent of inflammatory responses in mouse lungs. In:American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. Band 303, Nummer 10, November 2012, S. L889–L898,doi:10.1152/ajplung.00219.2012,PMID 23064950.
  21. M. Ralser, M. M. Wamelink, A. Kowald, B. Gerisch, G. Heeren, E. A. Struys, E. Klipp, C. Jakobs, M. Breitenbach, H. Lehrach, S. Krobitsch:Dynamic rerouting of the carbohydrate flux is key to counteracting oxidative stress. In:Journal of biology. Band 6, Nummer 4, Dezember 2007, S. 10,doi:10.1186/jbiol61,PMID 18154684,PMC 2373902 (freier Volltext).
  22. Bergmeyer, Hans Ulrich:Methoden der enzymatischen Analyse Band 1, Verlag Chemie, 3. Auflage, Weinheim 1974, S. 115.
  23. Stryer, Lubert:Biochemie, Spektrum der Wissenschaft Verlag, 4. Auflage, Heidelberg 1996, S. 527.
  24. E. J. Tisdale, C. R. Artalejo:A GAPDH mutant defective in Src-dependent tyrosine phosphorylation impedes Rab2-mediated events. In:Traffic. Band 8, Nummer 6, Juni 2007, S. 733–741,doi:10.1111/j.1600-0854.2007.00569.x,PMID 17488287,PMC 3775588 (freier Volltext).
  25. R. D. Barber, D. W. Harmer, R. A. Coleman, B. J. Clark:GAPDH as a housekeeping gene: analysis of GAPDH mRNA expression in a panel of 72 human tissues. In:Physiological genomics. Band 21, Nummer 3, Mai 2005, S. 389–395,doi:10.1152/physiolgenomics.00025.2005,PMID 15769908.
  26. R. T. Piszczatowski, B. J. Rafferty, A. Rozado, S. Tobak, N. H. Lents:The glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase gene (GAPDH) is regulated by myeloid zinc finger 1 (MZF-1) and is induced by calcitriol. In:Biochemical and biophysical research communications. Band 451, Nummer 1, August 2014, S. 137–141,doi:10.1016/j.bbrc.2014.07.082,PMID 25065746.
  27. D. Ramos, A. Pellín-Carcelén, J. Agustí, A. Murgui, E. Jordá, A. Pellín, C. Monteagudo:Deregulation of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase expression during tumor progression of human cutaneous melanoma. In:Anticancer Research. Band 35, Nummer 1, Januar 2015, S. 439–444,PMID 25550585.
  28. D. Wang, D. R. Moothart, D. R. Lowy, X. Qian:The expression of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase associated cell cycle (GACC) genes correlates with cancer stage and poor survival in patients with solid tumors. In:PLOS ONE. Band 8, Nummer 4, 2013, S. e61262,doi:10.1371/journal.pone.0061262,PMID 23620736,PMC 3631177 (freier Volltext).
  29. M. Phadke, N. Krynetskaia, A. Mishra, E. Krynetskiy:Accelerated cellular senescence phenotype of GAPDH-depleted human lung carcinoma cells. In:Biochemical and biophysical research communications. Band 411, Nummer 2, Juli 2011, S. 409–415,doi:10.1016/j.bbrc.2011.06.165,PMID 21749859,PMC 3154080 (freier Volltext).
  30. J. L. Mazzola, M. A. Sirover:Alteration of intracellular structure and function of glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase: a common phenotype of neurodegenerative disorders? In:Neurotoxicology. Band 23, Nummer 4–5, Oktober 2002, S. 603–609,PMID 12428732 (Review).
  31. M. Allen, C. Cox, O. Belbin, L. Ma, G. D. Bisceglio, S. L. Wilcox, C. C. Howell, T. A. Hunter, O. Culley, L. P. Walker, M. M. Carrasquillo, D. W. Dickson, R. C. Petersen, N. R. Graff-Radford, S. G. Younkin, N. Ertekin-Taner:Association and heterogeneity at the GAPDH locus in Alzheimer’s disease. In:Neurobiology of aging. Band 33, Nummer 1, Januar 2012, S. 203.e25–203.e33,doi:10.1016/j.neurobiolaging.2010.08.002,PMID 20864222,PMC 3017231 (freier Volltext).
Abgerufen von „https://de.wikipedia.org/w/index.php?title=Glycerinaldehyd-3-phosphat-Dehydrogenase&oldid=264215061
Kategorien:

[8]ページ先頭

©2009-2026 Movatter.jp